L'utilisation généralisée de pesticides synthétiques a entraîné de nombreux problèmes, notamment l'émergence d'organismes résistants, la dégradation de l'environnement et des dommages à la santé humaine.Il est donc urgent de trouver de nouveaux pesticides microbiens sans danger pour la santé humaine et l’environnement.Dans cette étude, le biosurfactant rhamnolipidique produit par Enterobacter cloacae SJ2 a été utilisé pour évaluer la toxicité pour les larves de moustiques (Culex quinquefasciatus) et de termites (Odontotermes obesus).Les résultats ont montré qu’il existait un taux de mortalité dose-dépendant entre les traitements.La valeur CL50 (concentration létale de 50 %) à 48 heures pour les biosurfactants des larves de termites et de moustiques a été déterminée à l'aide d'une méthode d'ajustement de courbe de régression non linéaire.Les résultats ont montré que les valeurs CL50 sur 48 heures (intervalle de confiance à 95 %) de l'activité larvicide et antitermite du biosurfactant étaient respectivement de 26,49 mg/L (plage de 25,40 à 27,57) et de 33,43 mg/L (plage de 31,09 à 35,68).Selon l'examen histopathologique, le traitement avec des biosurfactants a causé de graves dommages aux tissus organites des larves et des termites.Les résultats de cette étude indiquent que le biosurfactant microbien produit par Enterobacter cloacae SJ2 est un outil excellent et potentiellement efficace pour le contrôle de la Cx.quinquefasciatus et O. obesus.
Les pays tropicaux connaissent un grand nombre de maladies transmises par les moustiques1.L’importance des maladies transmises par les moustiques est largement répandue.Plus de 400 000 personnes meurent chaque année du paludisme et certaines grandes villes connaissent des épidémies de maladies graves telles que la dengue, la fièvre jaune, le chikungunya et le Zika.2 Les maladies à transmission vectorielle sont associées à une infection sur six dans le monde, les moustiques étant les plus responsables. cas significatifs3,4.Culex, Anopheles et Aedes sont les trois genres de moustiques les plus couramment associés à la transmission de maladies5.La prévalence de la dengue, une infection transmise par le moustique Aedes aegypti, a augmenté au cours de la dernière décennie et constitue une menace importante pour la santé publique4,7,8.Selon l'Organisation mondiale de la santé (OMS), plus de 40 % de la population mondiale est exposée au risque de contracter la dengue, avec 50 à 100 millions de nouveaux cas survenant chaque année dans plus de 100 pays9,10,11.La dengue est devenue un problème de santé publique majeur car son incidence a augmenté dans le monde entier12,13,14.Anopheles gambiae, communément appelé moustique anophèle africain, est le vecteur le plus important du paludisme humain dans les régions tropicales et subtropicales15.Le virus du Nil occidental, l'encéphalite de Saint-Louis, l'encéphalite japonaise et les infections virales des chevaux et des oiseaux sont transmis par les moustiques Culex, souvent appelés moustiques domestiques communs.De plus, ils sont également porteurs de maladies bactériennes et parasitaires16.Il existe plus de 3 000 espèces de termites dans le monde, et elles existent depuis plus de 150 millions d'années17.La plupart des ravageurs vivent dans le sol et se nourrissent de bois et de produits ligneux contenant de la cellulose.Le termite indien Odontotermes obesus est un ravageur important qui cause de graves dommages aux cultures et aux arbres de plantation importants18.Dans les zones agricoles, les infestations de termites à différents stades peuvent causer d’énormes dégâts économiques à diverses cultures, espèces d’arbres et matériaux de construction.Les termites peuvent également causer des problèmes de santé humaine19.
La question de la résistance des micro-organismes et des ravageurs dans les domaines pharmaceutique et agricole d'aujourd'hui est complexe20,21.Par conséquent, les deux sociétés devraient rechercher de nouveaux antimicrobiens rentables et des biopesticides sûrs.Des pesticides synthétiques sont désormais disponibles et se sont révélés infectieux et repoussent les insectes utiles non ciblés22.Ces dernières années, la recherche sur les biosurfactants s’est développée en raison de leurs applications dans diverses industries.Les biosurfactants sont très utiles et vitaux dans l’agriculture, l’assainissement des sols, l’extraction pétrolière, l’élimination des bactéries et des insectes et la transformation des aliments23,24.Les biosurfactants ou tensioactifs microbiens sont des produits chimiques biosurfactants produits par des micro-organismes tels que des bactéries, des levures et des champignons dans les habitats côtiers et les zones contaminées par le pétrole25,26.Les tensioactifs d'origine chimique et les biosurfactants sont deux types obtenus directement à partir de l'environnement naturel27.Divers biosurfactants sont obtenus à partir d’habitats marins28,29.Les scientifiques recherchent donc de nouvelles technologies pour la production de biosurfactants à base de bactéries naturelles30,31.Les progrès de ces recherches démontrent l’importance de ces composés biologiques pour la protection de l’environnement32.Bacillus, Pseudomonas, Rhodococcus, Alcaligenes, Corynebacterium et ces genres bactériens sont des représentants bien étudiés23,33.
Il existe de nombreux types de biosurfactants avec un large éventail d’applications34.Un avantage important de ces composés est que certains d’entre eux ont une activité antibactérienne, larvicide et insecticide.Cela signifie qu’ils peuvent être utilisés dans les industries agricole, chimique, pharmaceutique et cosmétique35,36,37,38.Étant donné que les biosurfactants sont généralement biodégradables et bénéfiques pour l’environnement, ils sont utilisés dans les programmes de lutte intégrée contre les ravageurs pour protéger les cultures39.Ainsi, des connaissances de base ont été acquises sur l'activité larvicide et antitermite des biosurfactants microbiens produits par Enterobacter cloacae SJ2.Nous avons examiné la mortalité et les changements histologiques lors de l'exposition à différentes concentrations de biosurfactants rhamnolipidiques.De plus, nous avons évalué le programme informatique QSAR (Quantitative Structure-Activity) Ecological Structure-Activity (ECOSAR) largement utilisé pour déterminer la toxicité aiguë pour les microalgues, les daphnies et les poissons.
Dans cette étude, l'activité antitermite (toxicité) des biosurfactants purifiés à diverses concentrations allant de 30 à 50 mg/ml (à intervalles de 5 mg/ml) a été testée contre les termites indiens, O. obesus et la quatrième espèce).Larves du stade Cx.Larves de moustiques quinquefasciatus.Concentrations de biosurfactant LC50 sur 48 heures contre O. obesus et Cx.C. solanacearum.Les larves de moustiques ont été identifiées à l’aide d’une méthode d’ajustement de courbe de régression non linéaire.Les résultats ont montré que la mortalité des termites augmentait avec l’augmentation de la concentration de biosurfactant.Les résultats ont montré que le biosurfactant avait une activité larvicide (Figure 1) et une activité anti-termites (Figure 2), avec des valeurs CL50 48 heures (IC 95 %) de 26,49 mg/L (25,40 à 27,57) et 33,43 mg/L. l (Fig. 31.09 à 35.68), respectivement (Tableau 1).En termes de toxicité aiguë (48 heures), le biosurfactant est classé « nocif » pour les organismes testés.Le biosurfactant produit dans cette étude a montré une excellente activité larvicide avec une mortalité de 100 % dans les 24 à 48 heures suivant l'exposition.
Calculez la valeur CL50 pour l’activité larvicide.Ajustement de la courbe de régression non linéaire (ligne continue) et intervalle de confiance à 95 % (zone ombrée) pour la mortalité relative (%).
Calculez la valeur CL50 pour l’activité anti-termites.Ajustement de la courbe de régression non linéaire (ligne continue) et intervalle de confiance à 95 % (zone ombrée) pour la mortalité relative (%).
A la fin de l'expérience, des changements morphologiques et des anomalies ont été observés au microscope.Des changements morphologiques ont été observés dans les groupes témoins et traités à un grossissement de 40x.Comme le montre la figure 3, un retard de croissance s'est produit chez la majorité des larves traitées avec des biosurfactants.La figure 3a montre un Cx normal.quinquefasciatus, la figure 3b montre un Cx anormal.Provoque cinq larves de nématodes.
Effet des doses sublétales (CL50) de biosurfactants sur le développement des larves de Culex quinquefasciatus.Image de microscopie optique (a) d’un Cx normal à un grossissement de 40×.quinquefasciatus (b) Cx anormale.Provoque cinq larves de nématodes.
Dans la présente étude, l'examen histologique des larves traitées (Fig. 4) et des termites (Fig. 5) a révélé plusieurs anomalies, notamment une réduction de la zone abdominale et des lésions musculaires, des couches épithéliales et de la peau.intestin moyen.L'histologie a révélé le mécanisme d'activité inhibitrice du biosurfactant utilisé dans cette étude.
Histopathologie des larves Cx normales du 4ème stade non traitées.quinquefasciatus (témoin : (a,b)) et traitées avec un biosurfactant (traitement : (c,d)).Les flèches indiquent l’épithélium intestinal traité (epi), les noyaux (n) et le muscle (mu).Barre = 50 µm.
Histopathologie d'O. obesus normal non traité (témoin : (a, b)) et traité par biosurfactant (traitement : (c, d)).Les flèches indiquent respectivement l'épithélium intestinal (epi) et le muscle (mu).Barre = 50 µm.
Dans cette étude, ECOSAR a été utilisé pour prédire la toxicité aiguë des produits biosurfactants rhamnolipides pour les producteurs primaires (algues vertes), les consommateurs primaires (puces d'eau) et les consommateurs secondaires (poissons).Ce programme utilise des modèles quantitatifs sophistiqués de composés structure-activité pour évaluer la toxicité en fonction de la structure moléculaire.Le modèle utilise un logiciel structure-activité (SAR) pour calculer la toxicité aiguë et à long terme des substances pour les espèces aquatiques.Plus précisément, le tableau 2 résume les concentrations létales moyennes (CL50) et les concentrations efficaces moyennes (CE50) estimées pour plusieurs espèces.La toxicité soupçonnée a été classée en quatre niveaux à l'aide du Système général harmonisé de classification et d'étiquetage des produits chimiques (tableau 3).
Lutte contre les maladies à transmission vectorielle, notamment les souches de moustiques et de moustiques Aedes.Égyptiens, travail désormais difficile 40,41,42,43,44,45,46.Bien que certains pesticides chimiquement disponibles, tels que les pyréthrinoïdes et les organophosphates, soient quelque peu bénéfiques, ils présentent des risques importants pour la santé humaine, notamment le diabète, les troubles de la reproduction, les troubles neurologiques, le cancer et les maladies respiratoires.De plus, avec le temps, ces insectes peuvent devenir résistants13,43,48.Ainsi, les mesures de lutte biologique efficaces et respectueuses de l’environnement deviendront une méthode de lutte contre les moustiques plus populaire49,50.Benelli51 a suggéré qu’une lutte précoce contre les moustiques vecteurs serait plus efficace dans les zones urbaines, mais n’a pas recommandé l’utilisation de larvicides dans les zones rurales52.Tom et al 53 ont également suggéré que le contrôle des moustiques à leurs stades immatures serait une stratégie simple et sûre car ils sont plus sensibles aux agents de contrôle 54 .
La production de biosurfactants par une souche puissante (Enterobacter cloacae SJ2) a montré une efficacité constante et prometteuse.Notre étude précédente avait montré qu'Enterobacter cloacae SJ2 optimisait la production de biosurfactants à l'aide de paramètres physicochimiques .Selon leur étude, les conditions optimales pour la production de biosurfactant par un isolat potentiel d'E. cloacae étaient une incubation de 36 heures, une agitation à 150 tr/min, un pH de 7,5, 37 °C, une salinité de 1 ppt, 2 % de glucose comme source de carbone, 1 % de levure. .l'extrait a été utilisé comme source d'azote pour obtenir 2,61 g/L de biosurfactant.De plus, les biosurfactants ont été caractérisés par CCM, FTIR et MALDI-TOF-MS.Cela a confirmé que le rhamnolipide est un biosurfactant.Les biosurfactants glycolipidiques constituent la classe d’autres types de biosurfactants la plus étudiée55.Ils sont constitués de parties glucidiques et lipidiques, principalement des chaînes d'acides gras.Parmi les glycolipides, les principaux représentants sont le rhamnolipide et le sophorolipide56.Les rhamnolipides contiennent deux fragments rhamnose liés à l'acide mono‐ ou di‐β‐hydroxydécanoïque 57 .L'utilisation des rhamnolipides dans les industries médicales et pharmaceutiques est bien établie 58, en plus de leur utilisation récente comme pesticides 59.
L'interaction du biosurfactant avec la région hydrophobe du siphon respiratoire permet à l'eau de traverser sa cavité stomatique, augmentant ainsi le contact des larves avec le milieu aquatique.La présence de biosurfactants affecte également la trachée, dont la longueur est proche de la surface, ce qui permet aux larves de ramper plus facilement jusqu'à la surface et de respirer.En conséquence, la tension superficielle de l’eau diminue.Comme les larves ne peuvent pas s’attacher à la surface de l’eau, elles tombent au fond du réservoir, perturbant la pression hydrostatique, entraînant une dépense énergétique excessive et la mort par noyade38,60.Des résultats similaires ont été obtenus par Ghribi61, où un biosurfactant produit par Bacillus subtilis a présenté une activité larvicide contre Ephestia kuehniella.De même, l'activité larvicide de Cx.Das et Mukherjee23 ont également évalué l'effet des lipopeptides cycliques sur les larves de quinquefasciatus.
Les résultats de cette étude concernent l'activité larvicide des biosurfactants rhamnolipidiques contre le Cx.La destruction des moustiques quinquefasciatus est conforme aux résultats publiés précédemment.Par exemple, des biosurfactants à base de surfactine produits par diverses bactéries du genre Bacillus sont utilisés.et Pseudomonas spp.Certains premiers rapports64,65,66 faisaient état d'une activité de destruction des larves de biosurfactants lipopeptidiques de Bacillus subtilis23.Deepali et coll.63 ont découvert que le biosurfactant rhamnolipidique isolé de Stenotropomonas maltophilia avait une puissante activité larvicide à une concentration de 10 mg/L.Silva et coll.67 ont rapporté l'activité larvicide du biosurfactant rhamnolipidique contre Ae à une concentration de 1 g/L.Aedes aegypti.Kanakdande et coll.68 ont rapporté que les biosurfactants lipopeptidiques produits par Bacillus subtilis provoquaient une mortalité globale chez les larves de Culex et les termites avec la fraction lipophile d'Eucalyptus.De même, Masendra et al.69 ont signalé une mortalité de fourmis ouvrières (Cryptotermes cynocephalus Light.) de 61,7 % dans les fractions lipophiles de n-hexane et d'EtOAc de l'extrait brut d'E.
Parthipan et al 70 ont rapporté l'utilisation insecticide de biosurfactants lipopeptidiques produits par Bacillus subtilis A1 et Pseudomonas stutzeri NA3 contre Anopheles Stephensi, un vecteur du parasite du paludisme Plasmodium.Ils ont observé que les larves et les pupes survivaient plus longtemps, avaient des périodes de ponte plus courtes, étaient stériles et avaient une durée de vie plus courte lorsqu'elles étaient traitées avec différentes concentrations de biosurfactants.Les valeurs CL50 observées du biosurfactant A1 de B. subtilis étaient respectivement de 3,58, 4,92, 5,37, 7,10 et 7,99 mg/L pour différents états larvaires (c'est-à-dire les larves I, II, III, IV et les stades pupes).En comparaison, les biosurfactants pour les stades larvaires I à IV et les stades nymphaux de Pseudomonas stutzeri NA3 étaient respectivement de 2,61, 3,68, 4,48, 5,55 et 6,99 mg/L.On pense que le retard phénologique des larves et des pupes survivantes est le résultat de perturbations physiologiques et métaboliques importantes causées par les traitements insecticides71.
La souche CCMA 0358 de Wickerhamomyces anomalus produit un biosurfactant ayant une activité larvicide à 100 % contre les moustiques Aedes.aegypti l'intervalle de 24 heures 38 était plus élevé que celui rapporté par Silva et al.Il a été démontré qu'un biosurfactant produit à partir de Pseudomonas aeruginosa en utilisant l'huile de tournesol comme source de carbone tue 100 % des larves en 48 heures 67 .Abinaya et al.72 et Pradhan et al.73 ont également démontré les effets larvicides ou insecticides des tensioactifs produits par plusieurs isolats du genre Bacillus.Une étude publiée précédemment par Senthil-Nathan et al.ont découvert que 100 % des larves de moustiques exposées aux lagunes végétales étaient susceptibles de mourir.74.
L'évaluation des effets sublétaux des insecticides sur la biologie des insectes est essentielle pour les programmes de lutte intégrée, car les doses/concentrations sublétales ne tuent pas les insectes mais peuvent réduire les populations d'insectes dans les générations futures en perturbant les caractéristiques biologiques10.Siqueira et al. 75 ont observé une activité larvicide complète (mortalité de 100 %) du biosurfactant rhamnolipidique (300 mg/ml) lorsqu'il a été testé à diverses concentrations allant de 50 à 300 mg/ml.Stade larvaire des souches d’Aedes aegypti.Ils ont analysé les effets du délai jusqu'à la mort et des concentrations sublétales sur la survie des larves et l'activité de nage.De plus, ils ont observé une diminution de la vitesse de nage après 24 à 48 heures d'exposition à des concentrations sublétales de biosurfactant (par exemple, 50 mg/mL et 100 mg/mL).On pense que les poisons qui ont des rôles sublétaux prometteurs sont plus efficaces pour causer de multiples dommages aux organismes nuisibles exposés76.
Les observations histologiques de nos résultats indiquent que les biosurfactants produits par Enterobacter cloacae SJ2 modifient de manière significative les tissus des larves de moustiques (Cx. quinquefasciatus) et de termites (O. obesus).Des anomalies similaires ont été provoquées par des préparations d’huile de basilic chez An.gambiaes.s et An.arabica ont été décrits par Ochola77.Kamaraj et al.78 ont également décrit les mêmes anomalies morphologiques chez An.Les larves de Stéphanie ont été exposées à des nanoparticules d'or.Vasantha-Srinivasan et al.79 ont également signalé que l'huile essentielle de bourse à pasteur endommageait gravement la chambre et les couches épithéliales d'Aedes albopictus.Aedes aegypti.Raghavendran et al. ont rapporté que les larves de moustiques avaient été traitées avec 500 mg/ml d'extrait mycélien d'un champignon Penicillium local.Ae présente de graves dommages histologiques.aegypti et Cx.Taux de mortalité 80. Auparavant, Abinaya et al.Les larves du quatrième stade d'An ont été étudiées.Stephensi et Ae.aegypti a trouvé de nombreux changements histologiques chez Aedes aegypti traités avec des exopolysaccharides de B. licheniformis, notamment du caecum gastrique, une atrophie musculaire, des lésions et une désorganisation des ganglions des cordons nerveux72.Selon Raghavendran et al., après traitement avec l'extrait mycélien de P. daleae, les cellules de l'intestin moyen des moustiques testés (larves du 4e stade) présentaient un gonflement de la lumière intestinale, une diminution du contenu intercellulaire et une dégénérescence nucléaire81.Les mêmes changements histologiques ont été observés chez les larves de moustiques traitées avec l’extrait de feuilles d’échinacée, indiquant le potentiel insecticide des composés traités50.
L'utilisation du logiciel ECOSAR a reçu une reconnaissance internationale82.Les recherches actuelles suggèrent que la toxicité aiguë des biosurfactants ECOSAR pour les microalgues (C. vulgaris), les poissons et les puces d'eau (D. magna) entre dans la catégorie de « toxicité » définie par les Nations Unies83.Le modèle d'écotoxicité ECOSAR utilise le SAR et le QSAR pour prédire la toxicité aiguë et à long terme des substances et est souvent utilisé pour prédire la toxicité des polluants organiques82,84.
Le paraformaldéhyde, le tampon phosphate de sodium (pH 7,4) et tous les autres produits chimiques utilisés dans cette étude ont été achetés auprès des laboratoires HiMedia, en Inde.
La production de biosurfactant a été réalisée dans des flacons Erlenmeyer de 500 ml contenant 200 ml de milieu stérile Bushnell Haas complété par 1% de pétrole brut comme seule source de carbone.Une préculture d'Enterobacter cloacae SJ2 (1,4 x 104 UFC/ml) a été inoculée et cultivée sur un agitateur orbital à 37°C, 200 tr/min pendant 7 jours.Après la période d'incubation, le biosurfactant a été extrait par centrifugation du milieu de culture à 3 400 x g pendant 20 min à 4 °C et le surnageant résultant a été utilisé à des fins de criblage.Les procédures d'optimisation et de caractérisation des biosurfactants ont été adoptées à partir de notre étude antérieure26.
Les larves de Culex quinquefasciatus ont été obtenues auprès du Centre d'études avancées en biologie marine (CAS), Palanchipetai, Tamil Nadu (Inde).Les larves ont été élevées dans des récipients en plastique remplis d'eau déminéralisée à 27 ± 2°C et une photopériode de 12:12 (clair : foncé).Les larves de moustiques ont été nourries avec une solution de glucose à 10 %.
Des larves de Culex quinquefasciatus ont été trouvées dans des fosses septiques ouvertes et non protégées.Utiliser les directives de classification standard pour identifier et cultiver les larves en laboratoire85.Des essais larvicides ont été réalisés conformément aux recommandations de l'Organisation mondiale de la santé 86 .SH.Les larves du quatrième stade de quinquefasciatus ont été collectées dans des tubes fermés en groupes de 25 ml et 50 ml avec une lame d'air aux deux tiers de leur capacité.Un biosurfactant (0 à 50 mg/ml) a été ajouté à chaque tube individuellement et conservé à 25 °C.Le tube témoin utilisait uniquement de l'eau distillée (50 ml).Les larves mortes étaient considérées comme celles qui ne montraient aucun signe de nage pendant la période d'incubation (12 à 48 heures) 87 .Calculez le pourcentage de mortalité larvaire à l’aide de l’équation.(1)88.
La famille des Odontotermitidae comprend le termite indien Odontotermes obesus, trouvé dans des bûches en décomposition sur le campus agricole (Université d'Annamalai, Inde).Testez ce biosurfactant (0 à 50 mg/ml) en utilisant les procédures normales pour déterminer s'il est nocif.Après séchage sous flux d'air laminaire pendant 30 min, chaque bande de papier Whatman a été enduite de biosurfactant à une concentration de 30, 40 ou 50 mg/ml.Des bandes de papier pré-enduites et non couchées ont été testées et comparées au centre d'une boîte de Pétri.Chaque boîte de Pétri contient une trentaine de termites actifs O. obesus.Les termites témoins et tests ont reçu du papier humide comme source de nourriture.Toutes les plaques ont été conservées à température ambiante pendant toute la période d'incubation.Les termites sont morts après 12, 24, 36 et 48 heures89,90.L’équation 1 a ensuite été utilisée pour estimer le pourcentage de mortalité des termites à différentes concentrations de biosurfactant.(2).
Les échantillons ont été conservés sur la glace et conditionnés dans des microtubes contenant 100 ml de tampon phosphate de sodium 0,1 M (pH 7,4) et envoyés au Laboratoire central de pathologie de l'aquaculture (CAPL) du Centre Rajiv Gandhi pour l'aquaculture (RGCA).Laboratoire d'histologie, Sirkali, Mayiladuthurai.District, Tamil Nadu, Inde pour une analyse plus approfondie.Les échantillons ont été immédiatement fixés dans du paraformaldéhyde à 4 % à 37°C pendant 48 heures.
Après la phase de fixation, le matériau a été lavé trois fois avec un tampon phosphate de sodium 0,1 M (pH 7,4), déshydraté progressivement dans de l'éthanol et trempé dans de la résine LEICA pendant 7 jours.La substance est ensuite placée dans un moule en plastique rempli de résine et de polymériseur, puis placée dans une étuve chauffée à 37°C jusqu'à ce que le bloc contenant la substance soit complètement polymérisé.
Après polymérisation, les blocs ont été découpés à l'aide d'un microtome LEICA RM2235 (Rankin Biomedical Corporation 10 399 Enterprise Dr. Davisburg, MI 48 350, USA) jusqu'à une épaisseur de 3 mm.Les sections sont regroupées sur des diapositives, avec six sections par diapositive.Les lames ont été séchées à température ambiante, puis colorées à l'hématoxyline pendant 7 min et lavées à l'eau courante pendant 4 min.De plus, appliquez la solution d'éosine sur la peau pendant 5 minutes et rincez à l'eau courante pendant 5 minutes.
La toxicité aiguë a été prédite en utilisant des organismes aquatiques de différents niveaux tropicaux : CL50 sur 96 heures pour les poissons, CL50 sur 48 heures pour D. magna et CE50 sur 96 heures pour les algues vertes.La toxicité des biosurfactants rhamnolipidiques pour les poissons et les algues vertes a été évaluée à l'aide du logiciel ECOSAR version 2.2 pour Windows développé par l'Environmental Protection Agency des États-Unis.(Disponible en ligne sur https://www.epa.gov/tsca-screening-tools/ecological-struct-activity-relationships-ecosar-predictive-model).
Tous les tests d'activité larvicide et antitermite ont été effectués en triple.Une régression non linéaire (log des variables dose-réponse) des données de mortalité des larves et des termites a été réalisée pour calculer la concentration létale médiane (CL50) avec un intervalle de confiance de 95 %, et des courbes concentration-réponse ont été générées à l'aide de Prism® (version 8.0, GraphPad Software) Inc. , États-Unis) 84, 91.
La présente étude révèle le potentiel des biosurfactants microbiens produits par Enterobacter cloacae SJ2 en tant qu'agents larvicides et antitermites contre les moustiques, et ces travaux contribueront à une meilleure compréhension des mécanismes d'action larvicide et antitermite.Les études histologiques des larves traitées avec des biosurfactants ont montré des lésions du tube digestif, de l'intestin moyen, du cortex cérébral et une hyperplasie des cellules épithéliales intestinales.Résultats : L'évaluation toxicologique de l'activité antitermite et larvicide du biosurfactant rhamnolipide produit par Enterobacter cloacae SJ2 a révélé que cet isolat est un biopesticide potentiel pour le contrôle des maladies à transmission vectorielle des moustiques (Cx quinquefasciatus) et des termites (O. obesus).Il est nécessaire de comprendre la toxicité environnementale sous-jacente des biosurfactants et leurs impacts environnementaux potentiels.Cette étude fournit une base scientifique pour évaluer le risque environnemental des biosurfactants.
Heure de publication : 09 avril 2024