L'utilisation généralisée de pesticides de synthèse a entraîné de nombreux problèmes, notamment l'émergence d'organismes résistants, la dégradation de l'environnement et des atteintes à la santé humaine. Par conséquent, de nouveaux microbespesticidesFrançais Des traitements sans danger pour la santé humaine et l'environnement sont nécessaires de toute urgence. Dans cette étude, le biosurfactant rhamnolipide produit par Enterobacter cloacae SJ2 a été utilisé pour évaluer la toxicité pour les larves de moustiques (Culex quinquefasciatus) et de termites (Odontotermes obesus). Les résultats ont montré qu'il y avait un taux de mortalité dose-dépendant entre les traitements. La valeur de la CL50 (concentration létale à 50 %) à 48 heures pour les biosurfactants pour larves de termites et de moustiques a été déterminée à l'aide d'une méthode d'ajustement de courbe de régression non linéaire. Les résultats ont montré que les valeurs de la CL50 à 48 heures (intervalle de confiance à 95 %) de l'activité larvicide et antitermite du biosurfactant étaient respectivement de 26,49 mg/L (plage de 25,40 à 27,57) et de 33,43 mg/L (plage de 31,09 à 35,68). D'après l'examen histopathologique, le traitement aux biosurfactants a causé de graves dommages aux tissus organites des larves et des termites. Les résultats de cette étude indiquent que le biosurfactant microbien produit par Enterobacter cloacae SJ2 est un outil excellent et potentiellement efficace pour la lutte contre Cx quinquefasciatus et O. obesus.
Français Les pays tropicaux sont confrontés à un grand nombre de maladies transmises par les moustiques1. L'importance des maladies transmises par les moustiques est répandue. Plus de 400 000 personnes meurent du paludisme chaque année, et certaines grandes villes connaissent des épidémies de maladies graves telles que la dengue, la fièvre jaune, le chikungunya et le virus Zika.2 Les maladies à transmission vectorielle sont associées à une infection sur six dans le monde, les moustiques étant à l'origine des cas les plus importants3 ,4. Culex, Anopheles et Aedes sont les trois genres de moustiques les plus fréquemment associés à la transmission de la maladie5. La prévalence de la dengue, une infection transmise par le moustique Aedes aegypti, a augmenté au cours de la dernière décennie et constitue une menace importante pour la santé publique4,7,8. Selon l'Organisation mondiale de la santé (OMS), plus de 40 % de la population mondiale est exposée au risque de dengue, avec 50 à 100 millions de nouveaux cas survenant chaque année dans plus de 100 pays9,10,11. La dengue est devenue un problème majeur de santé publique, son incidence ayant augmenté dans le monde entier12,13,14. Anopheles gambiae, communément appelé moustique anophèle africain, est le principal vecteur du paludisme humain dans les régions tropicales et subtropicales15. Le virus du Nil occidental, l'encéphalite de Saint-Louis, l'encéphalite japonaise et les infections virales des chevaux et des oiseaux sont transmis par les moustiques Culex, souvent appelés moustiques domestiques communs. De plus, ils sont également porteurs de maladies bactériennes et parasitaires16. Il existe plus de 3 000 espèces de termites dans le monde, présentes depuis plus de 150 millions d'années17. La plupart des ravageurs vivent dans le sol et se nourrissent de bois et de produits dérivés du bois contenant de la cellulose. Le termite indien Odontotermes obesus est un ravageur important qui cause de graves dommages aux cultures importantes et aux plantations d'arbres18. Dans les zones agricoles, les infestations de termites, à divers stades, peuvent causer d'énormes dommages économiques à diverses cultures, espèces d'arbres et matériaux de construction. Les termites peuvent également causer des problèmes de santé humaine19.
La question de la résistance des micro-organismes et des ravageurs dans les secteurs pharmaceutique et agricole actuels est complexe20,21. Par conséquent, les deux entreprises devraient rechercher de nouveaux antimicrobiens rentables et des biopesticides sûrs. Des pesticides de synthèse sont désormais disponibles et se sont révélés infectieux et repoussent les insectes utiles non ciblés22. Ces dernières années, la recherche sur les biosurfactants s'est développée grâce à leur application dans diverses industries. Les biosurfactants sont très utiles et essentiels dans l'agriculture, la dépollution des sols, l'extraction pétrolière, l'élimination des bactéries et des insectes, et la transformation des aliments23,24. Les biosurfactants, ou tensioactifs microbiens, sont des produits chimiques biosurfactants produits par des micro-organismes tels que les bactéries, les levures et les champignons dans les habitats côtiers et les zones contaminées par les hydrocarbures25,26. Les tensioactifs d'origine chimique et les biosurfactants sont deux types de tensioactifs obtenus directement du milieu naturel27. Divers biosurfactants sont obtenus à partir d'habitats marins28,29. Par conséquent, les scientifiques recherchent de nouvelles technologies pour la production de biosurfactants à base de bactéries naturelles30,31. Les progrès de ces recherches démontrent l’importance de ces composés biologiques pour la protection de l’environnement32. Bacillus, Pseudomonas, Rhodococcus, Alcaligenes, Corynebacterium et ces genres bactériens sont des représentants bien étudiés23,33.
Il existe de nombreux types de biosurfactants aux applications variées34. Un avantage majeur de ces composés est que certains d'entre eux possèdent une activité antibactérienne, larvicide et insecticide. Cela signifie qu'ils peuvent être utilisés dans les industries agricoles, chimiques, pharmaceutiques et cosmétiques35,36,37,38. Parce que les biosurfactants sont généralement biodégradables et respectueux de l'environnement, ils sont utilisés dans les programmes de lutte intégrée contre les ravageurs pour protéger les cultures39. Ainsi, des connaissances de base ont été acquises sur l'activité larvicide et antitermite des biosurfactants microbiens produits par Enterobacter cloacae SJ2. Nous avons examiné la mortalité et les modifications histologiques lors d'une exposition à différentes concentrations de biosurfactants rhamnolipidiques. De plus, nous avons évalué le programme informatique Structure-Activité Quantitative (QSAR) largement utilisé, Structure-Activité Écologique (ECOSAR), pour déterminer la toxicité aiguë pour les microalgues, les daphnies et les poissons.
Français Dans cette étude, l'activité antitermite (toxicité) de biosurfactants purifiés à diverses concentrations allant de 30 à 50 mg/ml (à des intervalles de 5 mg/ml) a été testée contre les termites indiens, O. obesus et la quatrième espèce )Évaluer. Larves du stade Cx. Larves de moustiques quinquefasciatus. Concentrations de CL50 du biosurfactant sur 48 heures contre O. obesus et Cx. C. solanacearum. Les larves de moustiques ont été identifiées à l'aide d'une méthode d'ajustement de courbe de régression non linéaire. Les résultats ont montré que la mortalité des termites augmentait avec l'augmentation de la concentration de biosurfactant. Français Les résultats ont montré que le biosurfactant avait une activité larvicide (Figure 1) et une activité anti-termites (Figure 2), avec des valeurs de CL50 à 48 heures (IC à 95 %) de 26,49 mg/L (25,40 à 27,57) et 33,43 mg/l (Fig. 31,09 à 35,68), respectivement (Tableau 1). En termes de toxicité aiguë (48 heures), le biosurfactant est classé comme « nocif » pour les organismes testés. Le biosurfactant produit dans cette étude a montré une excellente activité larvicide avec une mortalité de 100 % dans les 24 à 48 heures suivant l'exposition.
Calculer la valeur de la CL50 pour l'activité larvicide. Ajustement de la courbe de régression non linéaire (ligne continue) et intervalle de confiance à 95 % (zone ombrée) pour la mortalité relative (%).
Calculer la valeur de la CL50 pour l'activité anti-termites. Ajustement de la courbe de régression non linéaire (ligne continue) et intervalle de confiance à 95 % (zone ombrée) pour la mortalité relative (%).
À la fin de l'expérience, des modifications morphologiques et des anomalies ont été observées au microscope. Des modifications morphologiques ont été observées dans les groupes témoin et traité à un grossissement de 40x. Comme le montre la figure 3, un retard de croissance a été observé chez la majorité des larves traitées aux biosurfactants. La figure 3a montre un Cx. quinquefasciatus normal, tandis que la figure 3b montre un Cx. quinquefasciatus anormal. Provoque cinq larves de nématodes.
Effet de doses sublétales (CL50) de biosurfactants sur le développement des larves de Culex quinquefasciatus. Image de microscopie optique (a) d'une Cx normale à un grossissement de 40×. quinquefasciatus (b) Cx anormale. Provoque cinq larves de nématodes.
Dans la présente étude, l'examen histologique des larves traitées (Fig. 4) et des termites (Fig. 5) a révélé plusieurs anomalies, notamment une réduction de la zone abdominale et des lésions des muscles, des couches épithéliales et de la peau. L'histologie a révélé le mécanisme d'activité inhibitrice du biosurfactant utilisé dans cette étude.
Histopathologie de larves Cx normales non traitées au 4e stade. larves quinquefasciatus (témoin : (a, b)) et traitées par un biosurfactant (traitement : (c, d)). Les flèches indiquent l'épithélium intestinal (epi), les noyaux (n) et le muscle (mu) traités. Barre = 50 µm.
Histopathologie d'O. obesus normal non traité (témoin : (a, b)) et traité par biosurfactant (traitement : (c, d)). Les flèches indiquent respectivement l'épithélium intestinal (epi) et le muscle (mu). Barre = 50 µm.
Dans cette étude, ECOSAR a été utilisé pour prédire la toxicité aiguë des biosurfactants à base de rhamnolipides pour les producteurs primaires (algues vertes), les consommateurs primaires (puces d'eau) et les consommateurs secondaires (poissons). Ce programme utilise des modèles quantitatifs complexes de structure-activité pour évaluer la toxicité en fonction de la structure moléculaire. Le modèle utilise un logiciel de structure-activité (SAR) pour calculer la toxicité aiguë et à long terme des substances pour les espèces aquatiques. Plus précisément, le tableau 2 résume les concentrations létales moyennes (CL50) et les concentrations efficaces moyennes (CE50) estimées pour plusieurs espèces. La toxicité suspectée a été classée en quatre niveaux selon le Système général harmonisé de classification et d'étiquetage des produits chimiques (tableau 3).
Contrôle des maladies à transmission vectorielle, en particulier des souches de moustiques et des moustiques Aedes. Les Égyptiens, désormais un travail difficile 40,41,42,43,44,45,46. Bien que certains pesticides disponibles chimiquement, tels que les pyréthroïdes et les organophosphorés, soient quelque peu bénéfiques, ils présentent des risques importants pour la santé humaine, notamment le diabète, les troubles de la reproduction, les troubles neurologiques, le cancer et les maladies respiratoires. De plus, avec le temps, ces insectes peuvent y devenir résistants 13,43,48. Ainsi, des mesures de lutte biologique efficaces et respectueuses de l'environnement deviendront une méthode de lutte contre les moustiques plus populaire 49,50. Benelli 51 a suggéré qu'une lutte précoce contre les moustiques vecteurs serait plus efficace dans les zones urbaines, mais ils n'ont pas recommandé l'utilisation de larvicides dans les zones rurales 52. Tom et al 53 ont également suggéré que la lutte contre les moustiques à leurs stades immatures serait une stratégie sûre et simple car ils sont plus sensibles aux agents de lutte 54 .
Français La production de biosurfactants par une souche puissante (Enterobacter cloacae SJ2) a montré une efficacité constante et prometteuse. Notre étude précédente a rapporté qu'Enterobacter cloacae SJ2 optimise la production de biosurfactants en utilisant des paramètres physicochimiques26. Selon leur étude, les conditions optimales pour la production de biosurfactants par un isolat potentiel d'E. cloacae étaient une incubation de 36 heures, une agitation à 150 tr/min, un pH de 7,5, 37 °C, une salinité de 1 ppt, 2 % de glucose comme source de carbone, 1 % de levure. L'extrait a été utilisé comme source d'azote pour obtenir 2,61 g/L de biosurfactant. De plus, les biosurfactants ont été caractérisés par CCM, IRTF et MALDI-TOF-MS. Cela a confirmé que le rhamnolipide est un biosurfactant. Les biosurfactants glycolipidiques sont la classe la plus étudiée des autres types de biosurfactants55. Ils sont constitués de parties glucidiques et lipidiques, principalement des chaînes d'acides gras. Parmi les glycolipides, les principaux représentants sont le rhamnolipide et le sophorolipide56. Les rhamnolipides contiennent deux fractions rhamnose liées à l'acide mono- ou di-β-hydroxydécanoïque57. L'utilisation des rhamnolipides dans les industries médicales et pharmaceutiques est bien établie58, en plus de leur utilisation récente comme pesticides59.
L'interaction du biosurfactant avec la région hydrophobe du siphon respiratoire permet à l'eau de traverser sa cavité stomatique, augmentant ainsi le contact des larves avec le milieu aquatique. La présence de biosurfactants affecte également la trachée, dont la longueur est proche de la surface, ce qui facilite la remontée des larves à la surface et leur respiration. En conséquence, la tension superficielle de l'eau diminue. Comme les larves ne peuvent s'attacher à la surface de l'eau, elles tombent au fond du réservoir, perturbant la pression hydrostatique, entraînant une dépense énergétique excessive et la mort par noyade38,60. Des résultats similaires ont été obtenus par Ghribi61, où un biosurfactant produit par Bacillus subtilis a montré une activité larvicide contre Ephestia kuehniella. De même, l'activité larvicide de Cx. Das et Mukherjee23 ont également évalué l'effet des lipopeptides cycliques sur les larves de quinquefasciatus.
Français Les résultats de cette étude concernent l'activité larvicide des biosurfactants rhamnolipidiques contre Cx. L'élimination des moustiques quinquefasciatus est cohérente avec les résultats publiés précédemment. Par exemple, des biosurfactants à base de surfactine produits par diverses bactéries du genre Bacillus sont utilisés. et Pseudomonas spp. Certains rapports précoces64,65,66 ont rapporté une activité de destruction des larves de biosurfactants lipopeptidiques de Bacillus subtilis23. Deepali et al. 63 ont constaté que le biosurfactant rhamnolipidique isolé de Stenotropomonas maltophilia avait une puissante activité larvicide à une concentration de 10 mg/L. Silva et al. 67 ont rapporté l'activité larvicide du biosurfactant rhamnolipidique contre Ae à une concentration de 1 g/L. Aedes aegypti. Kanakdande et al. 68 ont rapporté que les biosurfactants lipopeptidiques produits par Bacillus subtilis provoquaient une mortalité globale chez les larves de Culex et les termites avec la fraction lipophile d'Eucalyptus. De même, Masendra et al. 69 ont rapporté une mortalité de 61,7 % chez les fourmis ouvrières (Cryptotermes cynocephalus Light.) dans les fractions lipophiles n-hexane et EtOAc de l'extrait brut d'E.
Parthipan et al 70 ont rapporté l'utilisation insecticide de biosurfactants lipopeptidiques produits par Bacillus subtilis A1 et Pseudomonas stutzeri NA3 contre Anopheles Stephensi, un vecteur du parasite du paludisme Plasmodium. Ils ont observé que les larves et les pupes survivaient plus longtemps, avaient des périodes de ponte plus courtes, étaient stériles et avaient une durée de vie plus courte lorsqu'elles étaient traitées avec différentes concentrations de biosurfactants. Les valeurs de CL50 observées du biosurfactant A1 de B. subtilis étaient respectivement de 3,58, 4,92, 5,37, 7,10 et 7,99 mg/L pour différents stades larvaires (c'est-à-dire larves I, II, III, IV et stades pupes). En comparaison, les biosurfactants pour les stades larvaires I à IV et les stades nymphaux de Pseudomonas stutzeri NA3 étaient respectivement de 2,61, 3,68, 4,48, 5,55 et 6,99 mg/L. On pense que le retard phénologique des larves et des nymphes survivantes est le résultat de perturbations physiologiques et métaboliques importantes causées par les traitements insecticides71.
Français La souche CCMA 0358 de Wickerhamomyces anomalus produit un biosurfactant avec une activité larvicide à 100 % contre les moustiques Aedes. L'intervalle de 24 heures entre les larves de P. aegypti 38 était plus élevé que celui rapporté par Silva et al. Un biosurfactant produit à partir de Pseudomonas aeruginosa en utilisant de l'huile de tournesol comme source de carbone s'est avéré tuer 100 % des larves en 48 heures 67 . Abinaya et al.72 et Pradhan et al.73 ont également démontré les effets larvicides ou insecticides des surfactants produits par plusieurs isolats du genre Bacillus. Une étude publiée précédemment par Senthil-Nathan et al. a révélé que 100 % des larves de moustiques exposées aux lagunes végétales étaient susceptibles de mourir. 74.
Français L'évaluation des effets sublétaux des insecticides sur la biologie des insectes est essentielle pour les programmes de lutte intégrée contre les ravageurs, car les doses/concentrations sublétales ne tuent pas les insectes, mais peuvent réduire les populations d'insectes dans les générations futures en perturbant les caractéristiques biologiques10. Siqueira et al. 75 ont observé une activité larvicide complète (mortalité de 100 %) du biosurfactant rhamnolipide (300 mg/ml) lorsqu'il a été testé à diverses concentrations allant de 50 à 300 mg/ml. Stade larvaire des souches d'Aedes aegypti. Ils ont analysé les effets du délai de mort et des concentrations sublétales sur la survie des larves et l'activité de nage. De plus, ils ont observé une diminution de la vitesse de nage après 24 à 48 heures d'exposition à des concentrations sublétales de biosurfactant (par exemple, 50 mg/ml et 100 mg/ml). Les poisons qui ont des rôles sublétaux prometteurs sont considérés comme plus efficaces pour causer des dommages multiples aux ravageurs exposés76.
Français Les observations histologiques de nos résultats indiquent que les biosurfactants produits par Enterobacter cloacae SJ2 altèrent significativement les tissus des larves de moustiques (Cx. quinquefasciatus) et de termites (O. obesus). Des anomalies similaires ont été causées par des préparations d'huile de basilic chez An. gambiaes.s et An. arabica ont été décrites par Ochola77. Kamaraj et al.78 ont également décrit les mêmes anomalies morphologiques chez An. Les larves de Stephanie ont été exposées à des nanoparticules d'or. Vasantha-Srinivasan et al.79 ont également rapporté que l'huile essentielle de bourse-à-pasteur endommageait gravement la chambre et les couches épithéliales d'Aedes albopictus. Aedes aegypti. Raghavendran et al ont rapporté que les larves de moustiques ont été traitées avec 500 mg/ml d'extrait mycélien d'un champignon local Penicillium. Ae présentent de graves dommages histologiques. aegypti et Cx. Taux de mortalité 80. Auparavant, Abinaya et al. Les larves du quatrième stade d'An ont été étudiées. Stephensi et Ae. aegypti ont trouvé de nombreux changements histologiques chez Aedes aegypti traité avec des exopolysaccharides de B. licheniformis, notamment un caecum gastrique, une atrophie musculaire, des lésions et une désorganisation des ganglions du cordon nerveux72. Selon Raghavendran et al., après traitement avec un extrait mycélien de P. daleae, les cellules de l'intestin moyen des moustiques testés (larves du 4e stade) présentaient un gonflement de la lumière intestinale, une diminution du contenu intercellulaire et une dégénérescence nucléaire81. Les mêmes changements histologiques ont été observés chez les larves de moustiques traitées avec un extrait de feuille d'échinacée, indiquant le potentiel insecticide des composés traités50.
L'utilisation du logiciel ECOSAR a reçu une reconnaissance internationale82. Les recherches actuelles suggèrent que la toxicité aiguë des biosurfactants ECOSAR pour les microalgues (C. vulgaris), les poissons et les puces d'eau (D. magna) entre dans la catégorie de « toxicité » définie par les Nations Unies83. Le modèle d'écotoxicité ECOSAR utilise les SAR et les QSAR pour prédire la toxicité aiguë et à long terme des substances et est souvent utilisé pour prédire la toxicité des polluants organiques82,84.
Le paraformaldéhyde, le tampon phosphate de sodium (pH 7,4) et tous les autres produits chimiques utilisés dans cette étude ont été achetés auprès de HiMedia Laboratories, en Inde.
Français La production de biosurfactants a été réalisée dans des flacons Erlenmeyer de 500 mL contenant 200 mL de milieu Bushnell Haas stérile supplémenté avec 1 % de pétrole brut comme seule source de carbone. Une préculture d'Enterobacter cloacae SJ2 (1,4 × 104 UFC/ml) a été inoculée et cultivée sur un agitateur orbital à 37 °C, 200 tr/min pendant 7 jours. Après la période d'incubation, le biosurfactant a été extrait par centrifugation du milieu de culture à 3400 × g pendant 20 min à 4 °C et le surnageant résultant a été utilisé à des fins de criblage. Les procédures d'optimisation et de caractérisation des biosurfactants ont été adoptées à partir de notre étude précédente26.
Les larves de Culex quinquefasciatus ont été obtenues auprès du Centre d'études avancées en biologie marine (CAS), à Palanchipetai, dans le Tamil Nadu (Inde). Elles ont été élevées dans des récipients en plastique remplis d'eau déionisée à 27 ± 2 °C et à une photopériode de 12:12 (lumière:obscurité). Les larves de moustiques ont été nourries avec une solution de glucose à 10 %.
Des larves de Culex quinquefasciatus ont été trouvées dans des fosses septiques ouvertes et non protégées. Utiliser les directives de classification standard pour identifier et cultiver les larves en laboratoire85. Des essais larvicides ont été réalisés conformément aux recommandations de l'Organisation mondiale de la santé86. SH. Les larves de quinquefasciatus au quatrième stade ont été collectées dans des tubes fermés par groupes de 25 ml et 50 ml avec un espace d'air aux deux tiers de leur capacité. Un biosurfactant (0–50 mg/ml) a été ajouté à chaque tube individuellement et conservé à 25 °C. Le tube témoin utilisait uniquement de l'eau distillée (50 ml). Les larves mortes ont été considérées comme celles qui ne présentaient aucun signe de nage pendant la période d'incubation (12–48 heures)87. Calculer le pourcentage de mortalité larvaire à l'aide de l'équation. (1)88.
La famille des Odontotermitidae comprend le termite indien Odontotermes obesus, trouvé dans des rondins en décomposition sur le campus agricole (Université Annamalai, Inde). Testez ce biosurfactant (0-50 mg/ml) en utilisant les procédures habituelles pour déterminer s'il est nocif. Après séchage sous flux d'air laminaire pendant 30 minutes, chaque bande de papier Whatman a été enduite de biosurfactant à une concentration de 30, 40 ou 50 mg/ml. Des bandes de papier pré-enduites et non enduites ont été testées et comparées au centre d'une boîte de Petri. Chaque boîte de Petri contient une trentaine de termites actifs O. obesus. Les termites témoins et les termites d'essai ont reçu du papier humide comme source de nourriture. Toutes les boîtes ont été conservées à température ambiante pendant toute la période d'incubation. Les termites sont morts après 12, 24, 36 et 48 heures89,90. L'équation 1 a ensuite été utilisée pour estimer le pourcentage de mortalité des termites à différentes concentrations de biosurfactant. (2).
Les échantillons ont été conservés sur glace et conditionnés dans des microtubes contenant 100 ml de tampon phosphate de sodium 0,1 M (pH 7,4) puis envoyés au Laboratoire central de pathologie aquacole (CAPL) du Centre Rajiv Gandhi pour l'aquaculture (RGCA). Laboratoire d'histologie, Sirkali, district de Mayiladuthurai, Tamil Nadu, Inde, pour analyse plus approfondie. Les échantillons ont été immédiatement fixés dans du paraformaldéhyde à 4 % à 37 °C pendant 48 heures.
Après la phase de fixation, le matériau a été lavé trois fois avec un tampon phosphate de sodium 0,1 M (pH 7,4), déshydraté progressivement dans de l'éthanol et trempé dans de la résine LEICA pendant 7 jours. La substance a ensuite été placée dans un moule en plastique rempli de résine et de polymérisateur, puis placée dans une étuve chauffée à 37 °C jusqu'à polymérisation complète du bloc contenant la substance.
Après polymérisation, les blocs ont été découpés à l'aide d'un microtome LEICA RM2235 (Rankin Biomedical Corporation, 10 399 Enterprise Dr. Davisburg, MI 48 350, États-Unis) sur une épaisseur de 3 mm. Les coupes ont été regroupées sur des lames, à raison de six coupes par lame. Les lames ont été séchées à température ambiante, puis colorées à l'hématoxyline pendant 7 minutes et lavées à l'eau courante pendant 4 minutes. De plus, la solution d'éosine a été appliquée sur la peau pendant 5 minutes, puis rincée à l'eau courante pendant 5 minutes.
La toxicité aiguë a été prédite à partir d'organismes aquatiques de différents niveaux tropicaux : CL50 à 96 heures pour les poissons, CL50 à 48 heures pour D. magna et CE50 à 96 heures pour les algues vertes. La toxicité des biosurfactants rhamnolipidiques pour les poissons et les algues vertes a été évaluée à l'aide du logiciel ECOSAR version 2.2 pour Windows, développé par l'Agence américaine de protection de l'environnement (EPA). (Disponible en ligne à l'adresse : https://www.epa.gov/tsca-screening-tools/ecological-struct-activity-relationships-ecosar-predictive-model).
Tous les tests d'activité larvicide et antitermite ont été réalisés en triple. Une régression non linéaire (logarithme des variables dose-réponse) des données de mortalité des larves et des termites a été réalisée pour calculer la concentration létale médiane (CL50) avec un intervalle de confiance à 95 %, et les courbes concentration-réponse ont été générées à l'aide de Prism® (version 8.0, GraphPad Software) Inc., États-Unis) 84, 91.
Français La présente étude révèle le potentiel des biosurfactants microbiens produits par Enterobacter cloacae SJ2 comme agents larvicides et antitermites contre les moustiques, et ce travail contribuera à une meilleure compréhension des mécanismes d'action larvicide et antitermite. Les études histologiques des larves traitées avec des biosurfactants ont montré des lésions du tube digestif, de l'intestin moyen, du cortex cérébral et une hyperplasie des cellules épithéliales intestinales. Résultats : L'évaluation toxicologique de l'activité antitermite et larvicide du biosurfactant rhamnolipide produit par Enterobacter cloacae SJ2 a révélé que cet isolat est un biopesticide potentiel pour la lutte contre les maladies à transmission vectorielle des moustiques (Cx quinquefasciatus) et des termites (O. obesus). Il est nécessaire de comprendre la toxicité environnementale sous-jacente des biosurfactants et leurs impacts environnementaux potentiels. Cette étude fournit une base scientifique pour évaluer le risque environnemental des biosurfactants.
Date de publication : 09/04/2024