Cette étude démontre que le champignon racinaire Kosakonia oryziphila NP19, isolé des racines de riz, est un biopesticide et un agent biochimique prometteur pour la croissance des plantes et la lutte contre la pyriculariose du riz. Des expériences in vitro ont été menées sur des feuilles fraîches de jeunes plants de riz aromatique Khao Dawk Mali 105 (KDML105). Les résultats ont montré que NP19 inhibe efficacement la germination des conidies du champignon responsable de la pyriculariose. L'infection fongique a été inhibée dans trois conditions de traitement différentes : inoculation du riz avec NP19 et des conidies fongiques ; inoculation simultanée des feuilles avec NP19 et des conidies fongiques ; et inoculation des feuilles avec des conidies fongiques suivie d'un traitement à NP19 30 h plus tard. De plus, NP19 a réduit la croissance des hyphes fongiques de 9,9 à 53,4 %. Lors d'expériences en pots, le virus NP19 a augmenté l'activité de la peroxydase (POD) et de la superoxyde dismutase (SOD) respectivement de 6,1 % à 63,0 % et de 3,0 % à 67,7 %, ce qui indique un renforcement des mécanismes de défense des plantes. Comparées aux plantes témoins non infectées par NP19, les plantes de riz infectées par NP19 ont présenté une augmentation de la teneur en pigments de 0,3 % à 24,7 %, du nombre de grains entiers par panicule de 4,1 %, du rendement en grains entiers de 26,3 %, de l'indice de masse du rendement de 34,4 % et de la teneur en 2-acétyl-1-pyrroline (2AP), un composé aromatique, de 10,1 %. Chez les plantes de riz infectées simultanément par NP19 et la pyriculariose, ces augmentations étaient respectivement de 0,2 % à 49,2 %, 4,6 %, 9,1 %, 54,4 % et 7,5 %. Des essais au champ ont montré que les plants de riz colonisés et/ou inoculés avec NP19 présentaient une augmentation du nombre de grains entiers par panicule de 15,1 à 27,2 %, du rendement en grains entiers de 103,6 à 119,8 % et de la teneur en 2AP de 18,0 à 35,8 %. Ces plants de riz présentaient également une activité SOD plus élevée (6,9 à 29,5 %) que les plants de riz infectés par la pyriculariose et non inoculés avec NP19. L'application foliaire de NP19 après l'infection a ralenti la progression des lésions. Ainsi, K. oryziphila NP19 s'est révélé être un bioagent potentiel de stimulation de la croissance végétale et un biopesticide pour la lutte contre la pyriculariose du riz.
Cependant, l’efficacité des fongicides est influencée par de nombreux facteurs, notamment leur formulation, le moment et la méthode d’application, la gravité de la maladie, l’efficacité des systèmes de prévision des maladies et l’émergence de souches résistantes. De plus, l’utilisation de fongicides chimiques peut entraîner une toxicité résiduelle dans l’environnement et présenter un risque pour la santé des utilisateurs.
Dans l'expérience en pots, les semences de riz ont été stérilisées en surface et mises à germer selon le protocole décrit précédemment. Elles ont ensuite été ensemencées avec K. oryziphila NP19 et repiquées dans des plateaux de semis. Les plantules ont été incubées pendant 30 jours afin de permettre leur émergence. Elles ont ensuite été repiquées dans des pots. Lors du repiquage, les plants de riz ont été fertilisés afin de les préparer à une éventuelle infection par le champignon responsable de la pyriculariose et d'évaluer leur résistance.
Dans une expérience en plein champ, des semences germées infectées par Aspergillus oryzae NP19 ont été traitées selon la méthode décrite précédemment et réparties en deux groupes : des semences infectées par Aspergillus oryzae NP19 (RS) et des semences non infectées (US). Les semences germées ont été semées dans des plateaux contenant un terreau stérilisé (un mélange de terre, de balles de riz brûlées et de fumier dans un rapport pondéral de 7:2:1) et incubées pendant 30 jours.
Une suspension de conidies de K. oryziphila a été ajoutée au riz R. Après 30 h d'incubation, 2 μl de K. oryziphila NP19 ont été ajoutés au même endroit. Toutes les boîtes de Petri ont été incubées à 25 °C à l'obscurité pendant 30 heures, puis sous éclairage continu. Chaque groupe a été testé en trois exemplaires. Après 72 heures d'incubation, des sections de plantes ont été examinées et observées au microscope électronique à balayage. Brièvement, les sections de plantes ont été fixées dans une solution saline tamponnée au phosphate contenant 2,5 % (v/v) de glutaraldéhyde et déshydratées dans une série de solutions d'éthanol. Les échantillons ont été séchés au point critique avec du dioxyde de carbone, puis métallisés à l'or et observés au microscope électronique à balayage pendant 15 minutes.
Date de publication : 13 octobre 2025