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Les plantes à feuillage décoratif et luxuriant sont très prisées. Une façon d'y parvenir est d'utiliserrégulateurs de croissance des plantescomme outils de gestion de la croissance des plantes. L'étude a été menée sur du Schefflera nain (une plante ornementale à feuillage) traité par pulvérisations foliaires deacide gibbérelliqueet l'hormone benzyladénine dans une serre équipée d'un système d'irrigation par brumisation. L'hormone a été pulvérisée sur les feuilles de schefflera nain à des concentrations de 0, 100 et 200 mg/l en trois étapes tous les 15 jours. L'expérience a été menée sur une base factorielle dans un plan complètement randomisé avec quatre répétitions. La combinaison d'acide gibbérellique et de benzyladénine à une concentration de 200 mg/l a eu un effet significatif sur le nombre de feuilles, la surface foliaire et la hauteur de la plante. Ce traitement a également entraîné la teneur la plus élevée en pigments photosynthétiques. De plus, les ratios les plus élevés de glucides solubles et de sucres réducteurs ont été observés avec la benzyladénine à 100 et 200 mg/l et l'acide gibbérellique + benzyladénine à 200 mg/l. Une analyse de régression pas à pas a montré que le volume racinaire était la première variable à entrer dans le modèle, expliquant 44 % de la variation. La variable suivante était la masse racinaire fraîche, le modèle bivarié expliquant 63 % de la variation du nombre de feuilles. L'effet positif le plus important sur le nombre de feuilles était exercé par le poids des racines fraîches (0,43), qui était positivement corrélé au nombre de feuilles (0,47). Les résultats ont montré que l'acide gibbérellique et la benzyladénine à une concentration de 200 mg/l amélioraient significativement la croissance morphologique, la synthèse de chlorophylle et de caroténoïdes de Liriodendron tulipifera, et réduisaient la teneur en sucres et en glucides solubles.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr est une plante ornementale à feuilles persistantes de la famille des Araliacées, originaire de Chine et de Taïwan1. Cette plante est souvent cultivée comme plante d'intérieur, mais un seul individu peut y pousser. Ses feuilles comptent de 5 à 16 folioles, chacune mesurant de 10 à 20 cm² de long. Le Schefflera nain est vendu en grandes quantités chaque année, mais les méthodes de jardinage modernes sont rarement utilisées. Par conséquent, l'utilisation de régulateurs de croissance des plantes comme outils de gestion efficaces pour améliorer la croissance et la production durable de produits horticoles requiert une attention accrue. Aujourd'hui, leur utilisation a considérablement augmenté3,4,5. L'acide gibbérellique est un régulateur de croissance des plantes qui peut augmenter le rendement6. L'un de ses effets connus est la stimulation de la croissance végétative, notamment l'allongement des tiges et des racines et l'augmentation de la surface foliaire7. L'effet le plus significatif des gibbérellines est l'augmentation de la hauteur des tiges due à l'allongement des entre-nœuds. La pulvérisation foliaire de gibbérellines sur les plantes naines incapables de produire des gibbérellines entraîne une augmentation de l'allongement de la tige et de la hauteur de la plante8. La pulvérisation foliaire des fleurs et des feuilles avec de l'acide gibbérellique à une concentration de 500 mg/l peut augmenter la hauteur de la plante, le nombre, la largeur et la longueur des feuilles9. Il a été rapporté que les gibbérellines stimulent la croissance de diverses plantes à feuilles larges10. L'allongement de la tige a été observé chez le pin sylvestre (Pinussylvestris) et l'épinette blanche (Piceaglauca) lorsque les feuilles ont été pulvérisées avec de l'acide gibbérellique11.
Français Une étude a examiné les effets de trois régulateurs de croissance des plantes à base de cytokinines sur la formation de branches latérales chez Lily officinalis. Des expériences ont été menées à l'automne et au printemps pour étudier les effets saisonniers. Les résultats ont montré que la kinétine, la benzyladénine et la 2-prényladénine n'affectaient pas la formation de branches supplémentaires. Cependant, 500 ppm de benzyladénine ont entraîné la formation de 12,2 et 8,2 branches subsidiaires dans les expériences d'automne et de printemps, respectivement, contre 4,9 et 3,9 branches chez les plantes témoins. Des études ont montré que les traitements d'été sont plus efficaces que ceux d'hiver12. Dans une autre expérience, des plantes de Peace Lily var. Tassone ont été traitées avec 0, 250 et 500 ppm de benzyladénine dans des pots de 10 cm de diamètre. Les résultats ont montré que le traitement du sol a augmenté de manière significative le nombre de feuilles supplémentaires par rapport aux plantes témoins et aux plantes traitées à la benzyladénine. De nouvelles feuilles supplémentaires ont été observées quatre semaines après le traitement, et la production foliaire maximale a été observée huit semaines après le traitement. Français À 20 semaines après le traitement, les plantes traitées au sol avaient un gain de hauteur inférieur à celui des plantes prétraitées13. Il a été rapporté que la benzyladénine à une concentration de 20 mg/L peut augmenter significativement la hauteur des plantes et le nombre de feuilles chez Croton 14. Chez les arums, la benzyladénine à une concentration de 500 ppm a entraîné une augmentation du nombre de branches, tandis que le nombre de branches était le plus faible dans le groupe témoin15. L'objectif de cette étude était d'examiner la pulvérisation foliaire d'acide gibbérellique et de benzyladénine pour améliorer la croissance de Schefflera dwarfa, une plante ornementale. Ces régulateurs de croissance des plantes peuvent aider les producteurs commerciaux à planifier une production appropriée tout au long de l'année. Aucune étude n'a été menée pour améliorer la croissance de Liriodendron tulipifera.
Cette étude a été menée dans la serre de recherche sur les plantes d'intérieur de l'Université islamique Azad de Jiloft, en Iran. Des plants de schefflera nain de 25 ± 5 cm de hauteur ont été transplantés uniformément (propagés six mois avant l'expérience) et semés en pots. Le pot est en plastique noir, d'un diamètre de 20 cm et d'une hauteur de 30 cm.
Français Le milieu de culture dans cette étude était un mélange de tourbe, d'humus, de sable lavé et de balle de riz dans un rapport de 1:1:1:1 (en volume)16. Placez une couche de galets au fond du pot pour le drainage. Les températures moyennes diurnes et nocturnes dans la serre à la fin du printemps et en été étaient respectivement de 32 ± 2 °C et de 28 ± 2 °C. L'humidité relative varie jusqu'à > 70 %. Utilisez un système de brumisation pour l'irrigation. En moyenne, les plantes sont arrosées 12 fois par jour. En automne et en été, la durée de chaque arrosage est de 8 minutes, l'intervalle d'arrosage est d'une heure. Les plantes ont été cultivées de la même manière quatre fois, 2, 4, 6 et 8 semaines après le semis, avec une solution de micronutriments (Ghoncheh Co., Iran) à une concentration de 3 ppm et irriguées avec 100 ml de solution à chaque fois. La solution nutritive contient N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm et des oligo-éléments Fe, Pb, Zn, Mn, Mo et B.
Trois concentrations d'acide gibbérellique et de benzyladénine, un régulateur de croissance des plantes (acheté auprès de Sigma), ont été préparées à 0, 100 et 200 mg/L et pulvérisées sur les bourgeons des plantes en trois étapes à un intervalle de 15 jours17. Du Tween 20 (0,1 %) (acheté auprès de Sigma) a été utilisé dans la solution pour augmenter sa longévité et son taux d'absorption. Tôt le matin, pulvérisez les hormones sur les bourgeons et les feuilles de Liriodendron tulipifera à l'aide d'un pulvérisateur. Les plantes sont pulvérisées avec de l'eau distillée.
La hauteur de la plante, le diamètre de la tige, la surface foliaire, la teneur en chlorophylle, le nombre d'entre-nœuds, la longueur des branches secondaires, le volume des racines, la longueur des racines, la masse des feuilles, des racines, de la tige et de la matière fraîche sèche, la teneur en pigments photosynthétiques (chlorophylle a, chlorophylle b) La chlorophylle totale, les caroténoïdes, les pigments totaux, les sucres réducteurs et les glucides solubles ont été mesurés dans différents traitements.
La teneur en chlorophylle des jeunes feuilles a été mesurée 180 jours après la pulvérisation à l'aide d'un chlorophyllomètre (Spad CL-01) de 9h30 à 10h (en raison de la fraîcheur des feuilles). La surface foliaire a également été mesurée 180 jours après la pulvérisation. Pesez trois feuilles de chaque pot, en haut, au milieu et en bas de la tige. Ces feuilles sont ensuite utilisées comme gabarits sur du papier A4 et le gabarit obtenu est découpé. Le poids et la surface d'une feuille de papier A4 ont également été mesurés. La surface des feuilles marquées au pochoir est ensuite calculée à l'aide des proportions. De plus, le volume des racines a été déterminé à l'aide d'une éprouvette graduée. Le poids sec des feuilles, le poids sec de la tige, le poids sec des racines et le poids sec total de chaque échantillon ont été mesurés par séchage au four à 72 °C pendant 48 heures.
La teneur en chlorophylle et en caroténoïdes a été mesurée par la méthode de Lichtenthaler18. Pour ce faire, 0,1 g de feuilles fraîches a été broyé dans un mortier en porcelaine contenant 15 ml d'acétone à 80 %. Après filtration, leur densité optique a été mesurée à l'aide d'un spectrophotomètre aux longueurs d'onde de 663,2, 646,8 et 470 nm. L'appareil a été étalonné avec de l'acétone à 80 %. Calculez la concentration en pigments photosynthétiques à l'aide de l'équation suivante :
Parmi eux, Chl a, Chl b, Chl T et Car représentent respectivement la chlorophylle a, la chlorophylle b, la chlorophylle totale et les caroténoïdes. Les résultats sont présentés en mg/ml plante.
Les sucres réducteurs ont été mesurés à l'aide de la méthode Somogy19. Pour ce faire, 0,02 g de pousses de plantes sont broyées dans un mortier en porcelaine avec 10 ml d'eau distillée et versées dans un petit verre. Porter le verre à ébullition, puis filtrer le contenu à l'aide d'un papier filtre Whatman n° 1 pour obtenir un extrait végétal. Transférer 2 ml de chaque extrait dans un tube à essai et ajouter 2 ml de solution de sulfate de cuivre. Couvrir le tube à essai avec du coton et chauffer au bain-marie à 100 °C pendant 20 minutes. À ce stade, le Cu2+ est converti en Cu2O par réduction du monosaccharide aldéhyde et une couleur saumon (terre cuite) apparaît au fond du tube à essai. Une fois le tube à essai refroidi, ajouter 2 ml d'acide phosphomolybdique et une couleur bleue apparaîtra. Agiter vigoureusement le tube jusqu'à ce que la couleur soit uniformément répartie dans le tube. Lire l'absorbance de la solution à 600 nm à l'aide d'un spectrophotomètre.
Calculer la concentration en sucres réducteurs à l'aide de la courbe standard. La concentration en glucides solubles a été déterminée par la méthode de Fales20. Pour ce faire, 0,1 g de germes a été mélangé à 2,5 ml d'éthanol à 80 % à 90 °C pendant 60 min (deux étapes de 30 min chacune) pour extraire les glucides solubles. L'extrait est ensuite filtré et l'alcool est évaporé. Le précipité obtenu est dissous dans 2,5 ml d'eau distillée. Verser 200 ml de chaque échantillon dans un tube à essai et ajouter 5 ml d'indicateur d'anthrone. Le mélange a été placé dans un bain-marie à 90 °C pendant 17 min, et après refroidissement, son absorbance a été déterminée à 625 nm.
L'expérience était une expérience factorielle basée sur un plan entièrement randomisé avec quatre répétitions. La procédure PROC UNIVARIATE est utilisée pour examiner la normalité des distributions de données avant l'analyse de la variance. L'analyse statistique a commencé par une analyse statistique descriptive afin de comprendre la qualité des données brutes collectées. Les calculs sont conçus pour simplifier et compresser de grands ensembles de données afin de les rendre plus faciles à interpréter. Par la suite, des analyses plus complexes ont été réalisées. Le test de Duncan a été réalisé à l'aide du logiciel SPSS (version 24 ; IBM Corporation, Armonk, NY, États-Unis) pour calculer les carrés moyens et les erreurs expérimentales afin de déterminer les différences entre les ensembles de données. Le test multiple de Duncan (DMRT) a été utilisé pour identifier les différences entre les moyennes à un niveau de signification de (0,05 ≤ p). Le coefficient de corrélation de Pearson ( r ) a été calculé à l'aide du logiciel SPSS (version 26 ; IBM Corp., Armonk, NY, États-Unis) pour évaluer la corrélation entre différentes paires de paramètres. De plus, une analyse de régression linéaire a été réalisée à l'aide du logiciel SPSS (v.26) pour prédire les valeurs des variables de première année en fonction des valeurs des variables de deuxième année. D'autre part, une analyse de régression pas à pas avec p < 0,01 a été réalisée pour identifier les caractéristiques qui influencent de manière critique les feuilles de schefflera nain. Une analyse de trajectoire a été réalisée pour déterminer les effets directs et indirects de chaque attribut du modèle (sur la base des caractéristiques qui expliquent le mieux la variation). Tous les calculs ci-dessus (normalité de la distribution des données, coefficient de corrélation simple, régression pas à pas et analyse de trajectoire) ont été effectués à l'aide du logiciel SPSS V.26.
Les échantillons de plantes cultivées sélectionnés étaient conformes aux directives institutionnelles, nationales et internationales pertinentes et à la législation nationale de l’Iran.
Le tableau 1 présente des statistiques descriptives de la moyenne, de l'écart type, du minimum, du maximum, de la plage et du coefficient de variation phénotypique (CV) pour divers caractères. Parmi ces statistiques, le CV permet la comparaison des attributs car il est sans dimension. Les sucres réducteurs (40,39 %), le poids sec des racines (37,32 %), le poids frais des racines (37,30 %), le rapport sucre/sucre (30,20 %) et le volume racinaire (30 %) sont les plus élevés. et la teneur en chlorophylle (9,88 %). ) et la surface foliaire ont l'indice le plus élevé (11,77 %) et ont la valeur de CV la plus faible. Le tableau 1 montre que le poids humide total a la plage la plus élevée. Cependant, ce caractère n'a pas le CV le plus élevé. Par conséquent, des mesures sans dimension telles que le CV doivent être utilisées pour comparer les changements d'attributs. Un CV élevé indique une grande différence entre les traitements pour ce caractère. Les résultats de cette expérience ont montré de grandes différences entre les traitements à faible teneur en sucre dans le poids sec des racines, le poids des racines fraîches, le rapport glucides/sucre et les caractéristiques du volume racinaire.
Les résultats de l'ANOVA ont montré que, par rapport au témoin, la pulvérisation foliaire d'acide gibbérellique et de benzyladénine avait un effet significatif sur la hauteur de la plante, le nombre de feuilles, la surface foliaire, le volume des racines, la longueur des racines, l'indice de chlorophylle, le poids frais et le poids sec.
La comparaison des valeurs moyennes a montré que les régulateurs de croissance des plantes avaient un effet significatif sur la hauteur des plantes et le nombre de feuilles. Les traitements les plus efficaces étaient l'acide gibbérellique à une concentration de 200 mg/l et l'acide gibbérellique + benzyladénine à une concentration de 200 mg/l. Par rapport au témoin, la hauteur des plantes et le nombre de feuilles ont augmenté respectivement de 32,92 fois et de 62,76 fois (tableau 2).
La surface foliaire a augmenté significativement dans toutes les variantes par rapport au témoin, l'augmentation maximale étant observée à 200 mg/l pour l'acide gibbérellique, atteignant 89,19 cm². Les résultats ont montré que la surface foliaire augmentait significativement avec l'augmentation de la concentration en régulateur de croissance (tableau 2).
Tous les traitements ont significativement augmenté le volume et la longueur des racines par rapport au témoin. L'association acide gibbérellique + benzyladénine a eu l'effet le plus important, augmentant de moitié le volume et la longueur des racines par rapport au témoin (tableau 2).
Les valeurs les plus élevées de diamètre de tige et de longueur d'entre-nœud ont été observées respectivement dans les traitements témoin et acide gibbérellique + benzyladénine 200 mg/l.
L'indice de chlorophylle a augmenté dans toutes les variantes par rapport au témoin. La valeur la plus élevée de ce trait a été observée lors du traitement par acide gibbérellique + benzyladénine 200 mg/l, soit 30,21 % de plus que le témoin (tableau 2).
Les résultats ont montré que le traitement entraînait des différences significatives dans la teneur en pigments, une réduction des sucres et des glucides solubles.
Le traitement à l'acide gibbérellique + benzyladénine a permis d'obtenir une teneur maximale en pigments photosynthétiques. Ce taux était significativement plus élevé dans toutes les variantes que dans le groupe témoin.
Les résultats ont montré que tous les traitements pouvaient augmenter la teneur en chlorophylle du Schefflera nain. Cependant, la valeur la plus élevée de ce trait a été observée avec le traitement acide gibbérellique + benzyladénine, soit 36,95 % de plus que le témoin (tableau 3).
Les résultats pour la chlorophylle b étaient complètement similaires aux résultats pour la chlorophylle a, la seule différence était l'augmentation de la teneur en chlorophylle b, qui était 67,15 % plus élevée que dans le témoin (tableau 3).
Le traitement a entraîné une augmentation significative de la chlorophylle totale par rapport au témoin. Le traitement avec de l'acide gibbérellique à 200 mg/l + de la benzyladénine à 100 mg/l a conduit à la valeur la plus élevée de ce trait, qui était 50 % supérieure à celle du témoin (tableau 3). D'après les résultats, le témoin et le traitement avec de la benzyladénine à une dose de 100 mg/l ont conduit aux taux les plus élevés de ce trait. Liriodendron tulipifera présente la valeur la plus élevée en caroténoïdes (tableau 3).
Les résultats ont montré que lorsqu'ils étaient traités avec de l'acide gibbérellique à une concentration de 200 mg/L, la teneur en chlorophylle a augmentait significativement en chlorophylle b (Fig. 1).
Effet de l'acide gibbérellique et de la benzyladénine sur les proportions de schefflera nain (GA3 : acide gibbérellique et BA : benzyladénine). Les mêmes lettres dans chaque figure indiquent que la différence n'est pas significative (p < 0,01).
L'effet de chaque traitement sur le poids frais et sec du bois de schefflera nain était significativement plus élevé que celui du témoin. L'association acide gibbérellique + benzyladénine à 200 mg/L s'est avérée la plus efficace, augmentant le poids frais de 138,45 % par rapport au témoin. Comparativement au témoin, tous les traitements, à l'exception de 100 mg/L de benzyladénine, ont significativement augmenté le poids sec des plantes, et l'association acide gibbérellique + benzyladénine à 200 mg/L a donné la valeur la plus élevée pour ce caractère (tableau 4).
La plupart des variantes différaient significativement du témoin à cet égard, les valeurs les plus élevées appartenant à 100 et 200 mg/l de benzyladénine et 200 mg/l d'acide gibbérellique + benzyladénine (Fig. 2).
Influence de l'acide gibbérellique et de la benzyladénine sur le rapport glucides solubles/sucres réducteurs chez le schefflera nain. (GA3 : acide gibbérellique et BA : benzyladénine). Les mêmes lettres dans chaque figure indiquent l'absence de différence significative (p < 0,01).
Une analyse de régression pas à pas a été réalisée afin de déterminer les attributs réels et de mieux comprendre la relation entre les variables indépendantes et le nombre de feuilles chez Liriodendron tulipifera. Le volume racinaire a été la première variable intégrée au modèle, expliquant 44 % de la variation. La variable suivante était le poids des racines fraîches, et ces deux variables expliquaient 63 % de la variation du nombre de feuilles (tableau 5).
Une analyse de trajectoire a été réalisée pour mieux interpréter la régression par étapes (tableau 6 et figure 3). L'effet positif le plus important sur le nombre de feuilles était associé à la masse racinaire fraîche (0,43), qui était positivement corrélée au nombre de feuilles (0,47). Cela indique que ce trait affecte directement le rendement, tandis que son effet indirect par l'intermédiaire d'autres traits est négligeable, et que ce trait peut être utilisé comme critère de sélection dans les programmes de sélection du schefflera nain. L'effet direct du volume racinaire était négatif (−0,67). L'influence de ce trait sur le nombre de feuilles est directe, l'influence indirecte est insignifiante. Cela indique que plus le volume racinaire est important, plus le nombre de feuilles est faible.
La figure 4 montre l'évolution de la régression linéaire du volume racinaire et des sucres réducteurs. Selon le coefficient de régression, chaque variation d'une unité de longueur racinaire et de glucides solubles se traduit par une variation du volume racinaire et des sucres réducteurs de 0,6019 et 0,311 unités.
Le coefficient de corrélation de Pearson des caractères de croissance est présenté dans la figure 5. Les résultats ont montré que le nombre de feuilles et la hauteur de la plante (0,379*) avaient la corrélation positive et la signification les plus élevées.
Carte thermique des relations entre les variables dans les coefficients de corrélation du taux de croissance. # Axe Y : 1-Index Ch., 2-Entre-nœud, 3-LAI, 4-N de feuilles, 5-Hauteur des pattes, 6-Diamètre de la tige. # Le long de l'axe X : A – index H., B – distance entre les nœuds, C – LAY, D – N. de la feuille, E – hauteur de la jambe du pantalon, F – diamètre de la tige.
Français Le coefficient de corrélation de Pearson pour les attributs liés au poids humide est présenté dans la Figure 6. Les résultats montrent la relation entre le poids humide des feuilles et le poids sec aérien (0,834**), le poids sec total (0,913**) et le poids sec des racines (0,562*). . La masse sèche totale a la corrélation positive la plus élevée et la plus significative avec la masse sèche des pousses (0,790**) et la masse sèche des racines (0,741**).
Carte thermique des relations entre les variables du coefficient de corrélation du poids frais. # Axe Y : 1 – poids des feuilles fraîches, 2 – poids des bourgeons frais, 3 – poids des racines fraîches, 4 – poids total des feuilles fraîches. # L'axe X représente : A – poids des feuilles fraîches, B – poids des bourgeons frais, CW – poids des racines fraîches, D – poids frais total.
Les coefficients de corrélation de Pearson pour les attributs liés au poids sec sont présentés dans la figure 7. Les résultats montrent que le poids sec des feuilles, le poids sec des bourgeons (0,848**) et le poids sec total (0,947**), le poids sec des bourgeons (0,854**) et la masse sèche totale (0,781**) ont les valeurs les plus élevées. corrélation positive et corrélation significative.
Carte thermique des relations entre les variables du coefficient de corrélation du poids sec. # L'axe Y représente : 1-poids sec des feuilles, 2-poids sec des bourgeons, 3-poids sec des racines, 4-poids sec total. # Axe X : A-poids sec des feuilles, B-poids sec des bourgeons, CW-poids sec des racines, D-poids sec total.
Le coefficient de corrélation de Pearson des propriétés des pigments est présenté dans la figure 8. Les résultats montrent que la chlorophylle a et la chlorophylle b (0,716**), la chlorophylle totale (0,968**) et les pigments totaux (0,954**) ; la chlorophylle b et la chlorophylle totale (0,868**) et les pigments totaux (0,851**) ; la chlorophylle totale a la corrélation positive et significative la plus élevée avec les pigments totaux (0,984**).
Carte thermique des relations entre les variables du coefficient de corrélation de la chlorophylle. # Axes Y : 1- Canal a, 2- Canal. b,3 - rapport a/b, 4 canaux. Total, 5-caroténoïdes, 6-rendement en pigments. # Axes X : A-Ch. aB-Ch. b,C - rapport a/b, D-Ch. Teneur totale, E-caroténoïdes, F-rendement en pigments.
Le Schefflera nain est une plante d'intérieur populaire dans le monde entier, et sa croissance et son développement font actuellement l'objet d'une attention particulière. L'utilisation de régulateurs de croissance a entraîné des différences significatives, tous les traitements augmentant la hauteur de la plante par rapport au témoin. Bien que la hauteur de la plante soit généralement contrôlée génétiquement, la recherche montre que l'application de régulateurs de croissance peut augmenter ou diminuer la hauteur de la plante. La hauteur de la plante et le nombre de feuilles traités avec l'acide gibbérellique + benzyladénine 200 mg/L étaient les plus élevés, atteignant respectivement 109 cm et 38,25 cm. Conformément aux études précédentes (SalehiSardoei et al.52) et Spathiphyllum23, des augmentations similaires de la hauteur de la plante dues au traitement à l'acide gibbérellique ont été observées chez les soucis en pot, l'albus alba21, les hémérocalles22, les hémérocalles, le bois d'agar et les spathiphyllums.
L'acide gibbérellique (AG) joue un rôle important dans divers processus physiologiques des plantes. Il stimule la division cellulaire, l'élongation cellulaire, l'élongation de la tige et l'augmentation de la taille24. L'AG induit la division cellulaire et l'élongation des apex des pousses et des méristèmes25. Les changements foliaires incluent également une diminution de l'épaisseur de la tige, une taille plus petite des feuilles et une couleur verte plus vive26. Des études utilisant des facteurs inhibiteurs ou stimulants ont montré que les ions calcium d'origine interne agissent comme seconds messagers dans la voie de signalisation de la gibbérelline dans la corolle du sorgho27. L'AH augmente la longueur de la plante en stimulant la synthèse d'enzymes responsables de la relaxation de la paroi cellulaire, telles que XET ou XTH, les expansines et PME28. Cela entraîne un élargissement des cellules à mesure que la paroi cellulaire se relâche et que l'eau pénètre dans la cellule29. L'application de GA7, GA3 et GA4 peut augmenter l'élongation de la tige30,31. L'acide gibbérellique provoque l'allongement de la tige chez les plantes naines et, chez les plantes en rosette, il retarde la croissance des feuilles et l'allongement des entre-nœuds32. Cependant, avant le stade reproductif, la longueur de la tige augmente jusqu'à 4 à 5 fois sa hauteur initiale33. Le processus de biosynthèse de l'acide gibbérellique chez les plantes est résumé à la figure 9.
Biosynthèse de GA chez les plantes et taux de GA bioactif endogène, représentation schématique des plantes (à droite) et biosynthèse de GA (à gauche). Les flèches sont codées par couleur pour correspondre à la forme d'HA indiquée le long de la voie de biosynthèse ; les flèches rouges indiquent une diminution des taux de GC due à la localisation dans les organes végétaux, et les flèches noires indiquent une augmentation des taux de GC. Chez de nombreuses plantes, comme le riz et la pastèque, la teneur en GA est plus élevée à la base ou dans la partie inférieure de la feuille30. De plus, certains rapports indiquent que la teneur en GA bioactif diminue à mesure que les feuilles s'allongent à partir de la base34. Les taux exacts de gibbérellines dans ces cas sont inconnus.
Les régulateurs de croissance des plantes influencent également significativement le nombre et la surface foliaire. Les résultats ont montré qu'une augmentation de la concentration en régulateur de croissance des plantes entraînait une augmentation significative de la surface et du nombre de feuilles. Il a été rapporté que la benzyladénine augmentait la production de feuilles de calla15. Selon les résultats de cette étude, tous les traitements ont amélioré la surface et le nombre de feuilles. L'association acide gibbérellique + benzyladénine s'est avérée la plus efficace et a permis d'obtenir le plus grand nombre et la plus grande surface foliaire. La culture du schefflera nain en intérieur peut entraîner une augmentation notable du nombre de feuilles.
Le traitement au GA3 a augmenté la longueur des entre-nœuds par rapport à la benzyladénine (BA) ou à l'absence de traitement hormonal. Ce résultat est logique compte tenu du rôle du GA dans la promotion de la croissance7. La croissance de la tige a également montré des résultats similaires. L'acide gibbérellique a augmenté la longueur de la tige mais a diminué son diamètre. Cependant, l'application combinée de BA et de GA3 a significativement augmenté la longueur de la tige. Cette augmentation était plus élevée par rapport aux plantes traitées avec BA ou sans l'hormone. Bien que l'acide gibbérellique et les cytokinines (CK) favorisent généralement la croissance des plantes, dans certains cas, ils ont des effets opposés sur différents processus35. Par exemple, une interaction négative a été observée dans l'augmentation de la longueur de l'hypocotyle chez les plantes traitées avec GA et BA36. D'autre part, BA a significativement augmenté le volume racinaire (tableau 1). Une augmentation du volume racinaire due à la BA exogène a été signalée chez de nombreuses plantes (par exemple, les espèces de Dendrobium et d'Orchidées)37,38.
Tous les traitements hormonaux ont augmenté le nombre de nouvelles feuilles. L'augmentation naturelle de la surface foliaire et de la longueur des tiges grâce à des traitements combinés est commercialement souhaitable. Le nombre de nouvelles feuilles est un indicateur important de la croissance végétative. L'utilisation d'hormones exogènes n'a pas été utilisée dans la production commerciale de Liriodendron tulipifera. Cependant, les effets stimulants de la croissance de GA et de CK, appliqués en équilibre, pourraient apporter de nouvelles perspectives pour améliorer la culture de cette plante. Notamment, l'effet synergique du traitement BA + GA3 était supérieur à celui de GA ou BA administrés seuls. L'acide gibbérellique augmente le nombre de nouvelles feuilles. À mesure que les nouvelles feuilles se développent, l'augmentation du nombre de nouvelles feuilles peut limiter la croissance foliaire39. Il a été rapporté que GA améliore le transport du saccharose des puits vers les organes sources40,41. De plus, l'application exogène de GA aux plantes vivaces peut favoriser la croissance des organes végétatifs tels que les feuilles et les racines, empêchant ainsi la transition de la croissance végétative à la croissance reproductive42.
Français L'effet de l'AG sur l'augmentation de la matière sèche des plantes peut s'expliquer par une augmentation de la photosynthèse due à une augmentation de la surface foliaire43. Il a été rapporté que l'AG provoquait une augmentation de la surface foliaire du maïs34. Les résultats ont montré qu'une augmentation de la concentration en BA à 200 mg/L pouvait augmenter la longueur et le nombre de branches secondaires et le volume des racines. L'acide gibbérellique influence les processus cellulaires tels que la stimulation de la division et de l'élongation cellulaires, améliorant ainsi la croissance végétative43. De plus, l'HA dilate la paroi cellulaire en hydrolysant l'amidon en sucre, réduisant ainsi le potentiel hydrique de la cellule, provoquant l'entrée d'eau dans la cellule et conduisant finalement à l'élongation cellulaire44.
Date de publication : 11 juin 2024