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Les plantes à feuillage décoratif à l’aspect luxuriant sont très appréciées.Une façon d’y parvenir consiste à utiliser des régulateurs de croissance végétale comme outils de gestion de la croissance végétale.L'étude a été menée sur Schefflera nain (une plante à feuillage ornemental) traitée avec des pulvérisations foliaires d'acide gibbérellique et d'hormone benzyladénine dans une serre équipée d'un système d'irrigation par brouillard.L'hormone a été pulvérisée sur les feuilles de Schefflera nain à des concentrations de 0, 100 et 200 mg/l en trois étapes tous les 15 jours.L'expérience a été menée sur une base factorielle dans un plan complètement randomisé avec quatre répétitions.La combinaison d'acide gibbérellique et de benzyladénine à une concentration de 200 mg/l a eu un effet significatif sur le nombre de feuilles, la surface foliaire et la hauteur de la plante.Ce traitement a également entraîné la teneur la plus élevée en pigments photosynthétiques.De plus, les ratios de glucides solubles et de sucres réducteurs les plus élevés ont été observés avec des traitements à 100 et 200 mg/L de benzyladénine et à 200 mg/L de gibbérelline + benzyladénine.L'analyse de régression pas à pas a montré que le volume racinaire était la première variable à entrer dans le modèle, expliquant 44 % de la variation.La variable suivante était la masse des racines fraîches, le modèle bivarié expliquant 63 % de la variation du nombre de feuilles.L'effet positif le plus important sur le nombre de feuilles a été exercé par le poids des racines fraîches (0,43), qui était positivement corrélé au nombre de feuilles (0,47).Les résultats ont montré que l'acide gibbérellique et la benzyladenine à une concentration de 200 mg/l amélioraient de manière significative la croissance morphologique, la synthèse de chlorophylle et de caroténoïde de Liriodendron tulipifera, et réduisaient la teneur en sucres et glucides solubles.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr est une plante ornementale à feuilles persistantes de la famille des Araliaceae, originaire de Chine et de Taiwan1.Cette plante est souvent cultivée comme plante d’intérieur, mais une seule plante peut pousser dans de telles conditions.Les feuilles ont de 5 à 16 folioles mesurant chacune 10 à 20 cm2 de long.Le Schefflera nain est vendu en grande quantité chaque année, mais les méthodes de jardinage modernes sont rarement utilisées.Par conséquent, l’utilisation de régulateurs de croissance végétale comme outils de gestion efficaces pour améliorer la croissance et la production durable de produits horticoles nécessite plus d’attention.Aujourd’hui, l’utilisation de régulateurs de croissance végétale a considérablement augmenté3,4,5.L'acide gibbérellique est un régulateur de croissance des plantes qui peut augmenter le rendement des plantes6.L’un de ses effets connus est la stimulation de la croissance végétative, notamment l’allongement des tiges et des racines et l’augmentation de la surface foliaire7.L'effet le plus significatif des gibbérellines est une augmentation de la hauteur de la tige due à l'allongement des entre-nœuds.La pulvérisation foliaire de gibbérellines sur des plantes naines qui ne peuvent pas produire de gibbérellines entraîne une augmentation de l'allongement de la tige et de la hauteur de la plante8.La pulvérisation foliaire des fleurs et des feuilles avec de l'acide gibbérellique à une concentration de 500 mg/l peut augmenter la hauteur des plantes, le nombre, la largeur et la longueur des feuilles9.Il a été rapporté que les gibbérellines stimulent la croissance de diverses plantes à feuilles larges10.Un allongement des tiges a été observé chez le pin sylvestre (Pinussylvestris) et l'épinette blanche (Piceaglauca) lorsque les feuilles ont été pulvérisées avec de l'acide gibbérellique11.
Une étude a examiné les effets de trois régulateurs de croissance des plantes cytokinines sur la formation de branches latérales chez Lily officinalis.virage Des expériences ont été menées à l'automne et au printemps pour étudier les effets saisonniers.Les résultats ont montré que la kinétine, la benzyladénine et la 2-prényladénine n’affectaient pas la formation de branches supplémentaires.Cependant, 500 ppm de benzyladénine ont entraîné la formation de 12,2 et 8,2 branches subsidiaires respectivement dans les expériences d'automne et de printemps, comparativement à 4,9 et 3,9 branches dans les plantes témoins.Des études ont montré que les traitements d’été sont plus efficaces que ceux d’hiver12.Dans une autre expérience, Peace Lily var.Les plants de Tassone ont été traités avec 0, 250 et 500 ppm de benzyladénine dans des pots de 10 cm de diamètre.Les résultats ont montré que le traitement du sol augmentait significativement le nombre de feuilles supplémentaires par rapport aux plantes témoins et traitées à la benzyladénine.De nouvelles feuilles supplémentaires ont été observées quatre semaines après le traitement, et une production maximale de feuilles a été observée huit semaines après le traitement.Vingt semaines après le traitement, les plantes traitées avec le sol avaient moins de gain de hauteur que les plantes prétraitées13.Il a été rapporté que la benzyladénine à une concentration de 20 mg/L peut augmenter considérablement la hauteur de la plante et le nombre de feuilles chez Croton 14. Chez les lys calla, la benzyladénine à une concentration de 500 ppm a entraîné une augmentation du nombre de branches, tandis que le nombre Le nombre de succursales était le plus faible dans le groupe témoin15.Le but de cette étude était d'étudier la pulvérisation foliaire d'acide gibbérellique et de benzyladénine pour améliorer la croissance de Schefflera dwarfa, une plante ornementale à feuillage.Ces régulateurs de croissance des plantes peuvent aider les producteurs commerciaux à planifier une production appropriée tout au long de l'année.Aucune étude n'a été menée pour améliorer la croissance de Liriodendron tulipifera.
Cette étude a été menée dans la serre de recherche sur les plantes d'intérieur de l'Université islamique Azad à Jiloft, en Iran.Des plants de racines naines uniformes de Schefflera d'une hauteur de 25 ± 5 cm ont été préparés (propagés six mois avant l'expérience) et semés en pots.Le pot est en plastique, noir, d'un diamètre de 20 cm et d'une hauteur de 30 cm16.
Le milieu de culture utilisé dans cette étude était un mélange de tourbe, d'humus, de sable lavé et de balle de riz dans un rapport de 1:1:1:1 (en volume)16.Placez une couche de cailloux au fond du pot pour le drainage.Les températures moyennes diurnes et nocturnes dans la serre à la fin du printemps et en été étaient respectivement de 32 ± 2 °C et 28 ± 2 °C.L'humidité relative varie jusqu'à >70 %.Utilisez un système de brumisation pour l’irrigation.En moyenne, les plantes sont arrosées 12 fois par jour.En automne et en été, la durée de chaque arrosage est de 8 minutes et l'intervalle entre les arrosages est de 1 heure.Les plantes ont été cultivées de la même manière quatre fois, 2, 4, 6 et 8 semaines après le semis, avec une solution de micronutriments (Ghoncheh Co., Iran) à une concentration de 3 ppm et irriguées avec 100 ml de solution à chaque fois.La solution nutritive contient N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm et des oligoéléments Fe, Pb, Zn, Mn, Mo et B.
Trois concentrations d'acide gibbérellique et de benzyladénine, un régulateur de croissance des plantes (acheté chez Sigma), ont été préparées à 0, 100 et 200 mg/L et pulvérisées sur les bourgeons des plantes en trois étapes à un intervalle de 15 jours17.Du Tween 20 (0,1 %) (acheté auprès de Sigma) a été utilisé dans la solution pour augmenter sa longévité et son taux d'absorption.Tôt le matin, vaporisez les hormones sur les bourgeons et les feuilles de Liriodendron tulipifera à l'aide d'un pulvérisateur.Les plantes sont aspergées d'eau distillée.
Hauteur de la plante, diamètre de la tige, surface des feuilles, teneur en chlorophylle, nombre d'entre-nœuds, longueur des branches secondaires, nombre de branches secondaires, volume des racines, longueur des racines, masse de feuille, racine, tige et matière fraîche sèche, teneur en pigments photosynthétiques (chlorophylle a, chlorophylle b) La chlorophylle totale, les caroténoïdes, les pigments totaux), les sucres réducteurs et les glucides solubles ont été mesurés dans différents traitements.
La teneur en chlorophylle des jeunes feuilles a été mesurée 180 jours après la pulvérisation à l'aide d'un chlorophyllemètre (Spad CL-01) de 9h30 à 10h (en raison de la fraîcheur des feuilles).De plus, la surface foliaire a été mesurée 180 jours après la pulvérisation.Pesez trois feuilles du haut, du milieu et du bas de la tige de chaque pot.Ces feuilles sont ensuite utilisées comme modèles sur du papier A4 et le motif obtenu est découpé.Le grammage et la surface d'une feuille de papier A4 ont également été mesurés.Ensuite, la surface des feuilles au pochoir est calculée à l'aide des proportions.De plus, le volume de la racine a été déterminé à l’aide d’une éprouvette graduée.Le poids sec des feuilles, le poids sec de la tige, le poids sec des racines et le poids sec total de chaque échantillon ont été mesurés par séchage au four à 72°C pendant 48 heures.
La teneur en chlorophylle et en caroténoïdes a été mesurée par la méthode Lichtenthaler18.Pour ce faire, 0,1 g de feuilles fraîches ont été broyées dans un mortier de porcelaine contenant 15 ml d'acétone à 80 %, et après filtration, leur densité optique a été mesurée à l'aide d'un spectrophotomètre aux longueurs d'onde de 663,2, 646,8 et 470 nm.Calibrez l'appareil avec de l'acétone à 80 %.Calculez la concentration de pigments photosynthétiques à l’aide de l’équation suivante :
Parmi eux, Chl a, Chl b, Chl T et Car représentent respectivement la chlorophylle a, la chlorophylle b, la chlorophylle totale et les caroténoïdes.Les résultats sont présentés en mg/ml plante.
Les sucres réducteurs ont été mesurés selon la méthode Somogy19.Pour ce faire, 0,02 g de pousses de plantes sont broyés dans un mortier en porcelaine avec 10 ml d'eau distillée et versés dans un petit verre.Portez le verre à ébullition puis filtrez son contenu à l'aide d'un papier filtre Whatman n°1 pour obtenir un extrait de plante.Transférer 2 ml de chaque extrait dans un tube à essai et ajouter 2 ml de solution de sulfate de cuivre.Couvrir le tube à essai d'un coton et chauffer au bain-marie à 100°C pendant 20 minutes.A ce stade, Cu2+ est converti en Cu2O par réduction des monosaccharides aldéhydiques et une couleur saumonée (couleur terre cuite) est visible au fond du tube à essai.Une fois le tube à essai refroidi, ajoutez 2 ml d'acide phosphomolybdique et une couleur bleue apparaîtra.Agiter vigoureusement le tube jusqu'à ce que la couleur soit répartie uniformément dans tout le tube.Lire l'absorbance de la solution à 600 nm à l'aide d'un spectrophotomètre.
Calculez la concentration de sucres réducteurs à l’aide de la courbe étalon.La concentration en glucides solubles a été déterminée par la méthode Fales20.Pour ce faire, 0,1 g de germes ont été mélangés à 2,5 ml d'éthanol à 80 % à 90 °C pendant 60 min (deux étapes de 30 min chacune) pour extraire les glucides solubles.L'extrait est ensuite filtré et l'alcool est évaporé.Le précipité obtenu est dissous dans 2,5 ml d'eau distillée.Versez 200 ml de chaque échantillon dans un tube à essai et ajoutez 5 ml d'indicateur d'anthrone.Le mélange a été placé dans un bain-marie à 90°C pendant 17 min et après refroidissement, son absorbance a été déterminée à 625 nm.
L'expérience était une expérience factorielle basée sur un plan complètement randomisé avec quatre répétitions.La procédure PROC UNIVARIATE est utilisée pour examiner la normalité des distributions de données avant l'analyse de la variance.L'analyse statistique a commencé par une analyse statistique descriptive pour comprendre la qualité des données brutes collectées.Les calculs sont conçus pour simplifier et compresser de grands ensembles de données afin de les rendre plus faciles à interpréter.Des analyses plus complexes ont ensuite été réalisées.Le test de Duncan a été réalisé à l'aide du logiciel SPSS (version 24 ; IBM Corporation, Armonk, NY, USA) pour calculer les carrés moyens et les erreurs expérimentales afin de déterminer les différences entre les ensembles de données.Le test multiple de Duncan (DMRT) a été utilisé pour identifier les différences entre les moyennes à un niveau de signification de (0,05 ≤ p).Le coefficient de corrélation de Pearson ( r ) a été calculé à l'aide du logiciel SPSS (version 26 ; IBM Corp., Armonk, NY, USA) pour évaluer la corrélation entre différentes paires de paramètres.De plus, une analyse de régression linéaire a été réalisée à l'aide du logiciel SPSS (v.26) pour prédire les valeurs des variables de la première année en fonction des valeurs des variables de la deuxième année.D'autre part, une analyse de régression pas à pas avec p <0, 01 a été réalisée pour identifier les traits qui influencent de manière critique les feuilles naines de Schefflera.Une analyse du chemin a été réalisée pour déterminer les effets directs et indirects de chaque attribut du modèle (sur la base des caractéristiques qui expliquent mieux la variation).Tous les calculs ci-dessus (normalité de la distribution des données, coefficient de corrélation simple, régression pas à pas et analyse de chemin) ont été effectués à l'aide du logiciel SPSS V.26.
Les échantillons de plantes cultivées sélectionnés étaient conformes aux directives institutionnelles, nationales et internationales pertinentes et à la législation nationale de l'Iran.
Le tableau 1 présente des statistiques descriptives de la moyenne, de l'écart type, du minimum, du maximum, de la plage et du coefficient de variation phénotypique (CV) pour divers caractères.Parmi ces statistiques, le CV permet de comparer les attributs car il est sans dimension.Les sucres réducteurs (40,39 %), le poids sec des racines (37,32 %), le poids des racines fraîches (37,30 %), le rapport sucre/sucre (30,20 %) et le volume des racines (30 %) sont les plus élevés.et teneur en chlorophylle (9,88%).) et la surface foliaire ont l'indice le plus élevé (11,77 %) et la valeur CV la plus faible.Le tableau 1 montre que le poids total humide présente la plage la plus élevée.Cependant, ce trait n’a pas le CV le plus élevé.Par conséquent, des mesures sans dimension telles que le CV doivent être utilisées pour comparer les changements d'attributs.Un CV élevé indique une grande différence entre les traitements pour ce caractère.Les résultats de cette expérience ont montré de grandes différences entre les traitements à faible teneur en sucre en termes de poids sec des racines, de poids des racines fraîches, de rapport glucides/sucre et de caractéristiques de volume des racines.
Les résultats de l'analyse de variance ont montré que, par rapport au témoin, la pulvérisation foliaire d'acide gibbérellique et de benzyladénine avait un effet significatif sur la hauteur de la plante, le nombre de feuilles, la surface foliaire, le volume et la longueur des racines, l'indice de chlorophylle, le poids frais et sec. poids.
La comparaison des valeurs moyennes a montré que les régulateurs de croissance des plantes avaient un effet significatif sur la hauteur des plantes et le nombre de feuilles.Les traitements les plus efficaces étaient l'acide gibbérellique à la concentration de 200 mg/l et l'acide gibbérellique + benzyladénine à la concentration de 200 mg/l.Par rapport au témoin, la hauteur de la plante et le nombre de feuilles ont augmenté respectivement de 32,92 fois et 62,76 fois (tableau 2).
La surface foliaire a augmenté de manière significative dans toutes les variantes par rapport au témoin, l'augmentation maximale étant observée à 200 mg/l pour l'acide gibbérellique, atteignant 89,19 cm2.Les résultats ont montré que la surface foliaire augmentait de manière significative avec l'augmentation de la concentration en régulateur de croissance (Tableau 2).
Tous les traitements ont augmenté de manière significative le volume et la longueur des racines par rapport au contrôle.La combinaison acide gibbérellique + benzyladénine a eu le plus grand effet, augmentant de moitié le volume et la longueur de la racine par rapport au témoin (tableau 2).
Les valeurs les plus élevées de diamètre de tige et de longueur d'entre-nœud ont été observées respectivement dans les traitements témoin et acide gibbérellique + benzyladénine 200 mg/l.
L'indice de chlorophylle a augmenté dans toutes les variantes par rapport au témoin.La valeur la plus élevée de ce trait a été observée lors du traitement avec l'acide gibbérellique + benzyladénine 200 mg/l, soit 30,21 % de plus que le témoin (Tableau 2).
Les résultats ont montré que le traitement entraînait des différences significatives dans la teneur en pigments, une réduction des sucres et des glucides solubles.
Le traitement à l'acide gibbérellique + benzyladénine a permis d'obtenir une teneur maximale en pigments photosynthétiques.Ce signe était significativement plus élevé dans toutes les variantes que dans le contrôle.
Les résultats ont montré que tous les traitements pouvaient augmenter la teneur en chlorophylle du Schefflera nain.Cependant, la valeur la plus élevée de ce trait a été observée dans le traitement à l'acide gibbérellique + benzyladénine, qui était 36,95 % plus élevée que le témoin (tableau 3).
Les résultats pour la chlorophylle b étaient complètement similaires à ceux pour la chlorophylle a, la seule différence étant l'augmentation de la teneur en chlorophylle b, qui était de 67,15 % supérieure à celle du témoin (tableau 3).
Le traitement a entraîné une augmentation significative de la chlorophylle totale par rapport au contrôle.Le traitement avec de l'acide gibbérellique 200 mg/l + benzyladénine 100 mg/l a conduit à la valeur la plus élevée de ce caractère, qui était 50 % supérieure à celle du contrôle (Tableau 3).Selon les résultats, le contrôle et le traitement à la benzyladénine à la dose de 100 mg/l ont conduit aux taux les plus élevés de ce caractère.Liriodendron tulipifera a la valeur la plus élevée en caroténoïdes (Tableau 3).
Les résultats ont montré que lorsqu'elle était traitée avec de l'acide gibbérellique à une concentration de 200 mg/L, la teneur en chlorophylle a augmentait de manière significative jusqu'à celle en chlorophylle b (Fig. 1).
Effet de l'acide gibbérellique et de la benzyladénine sur a/b Ch.Proportions de schefflera nain.(GA3 : acide gibbérellique et BA : benzyladénine).Les mêmes lettres dans chaque figure n'indiquent aucune différence significative (P <0,01).
L'effet de chaque traitement sur le poids frais et sec du bois de schefflera nain était significativement supérieur à celui du contrôle.L'acide gibbérellique + benzyladénine à la dose de 200 mg/l était le traitement le plus efficace, augmentant le poids frais de 138,45 % par rapport au contrôle.Par rapport au témoin, tous les traitements, à l'exception de 100 mg/L de benzyladenine, ont augmenté de manière significative le poids sec de la plante, et 200 mg/L d'acide gibbérellique + benzyladenine ont donné la valeur la plus élevée pour ce caractère (Tableau 4).
La plupart des variantes différaient significativement du contrôle à cet égard, les valeurs les plus élevées appartenant à 100 et 200 mg/l de benzyladénine et à 200 mg/l d'acide gibbérellique + benzyladénine (Fig. 2).
L'influence de l'acide gibbérellique et de la benzyladénine sur le rapport des glucides solubles et des sucres réducteurs chez le schefflera nain.(GA3 : acide gibbérellique et BA : benzyladénine).Les mêmes lettres dans chaque figure n'indiquent aucune différence significative (P <0,01).
Une analyse de régression pas à pas a été réalisée pour déterminer les attributs réels et mieux comprendre la relation entre les variables indépendantes et le nombre de feuilles chez Liriodendron tulipifera.Le volume des racines a été la première variable entrée dans le modèle, expliquant 44 % de la variation.La variable suivante était le poids des racines fraîches, et ces deux variables expliquaient 63 % de la variation du nombre de feuilles (tableau 5).
Une analyse du chemin a été réalisée pour mieux interpréter la régression pas à pas (Tableau 6 et Figure 3).L'effet positif le plus important sur le nombre de feuilles était associé à la masse de racines fraîches (0,43), qui était positivement corrélée au nombre de feuilles (0,47).Cela indique que ce caractère affecte directement le rendement, alors que son effet indirect via d'autres caractères est négligeable, et que ce caractère peut être utilisé comme critère de sélection dans les programmes de sélection du schefflera nain.L’effet direct du volume racinaire était négatif (−0,67).L'influence de ce trait sur le nombre de feuilles est directe, l'influence indirecte est insignifiante.Cela indique que plus le volume des racines est grand, plus le nombre de feuilles est petit.
La figure 4 montre les changements dans la régression linéaire du volume des racines et des sucres réducteurs.Selon le coefficient de régression, chaque changement d'unité dans la longueur des racines et les glucides solubles signifie que le volume des racines et les sucres réducteurs changent de 0,6019 et 0,311 unités.
Le coefficient de corrélation de Pearson des traits de croissance est présenté à la figure 5. Les résultats ont montré que le nombre de feuilles et la hauteur de la plante (0,379*) présentaient la corrélation positive et la signification la plus élevée.
Carte thermique des relations entre les variables dans les coefficients de corrélation du taux de croissance.# Axe Y : 1-Index Ch., 2-Entre-nœuds, 3-LAI, 4-N des feuilles, 5-Hauteur des pattes, 6-Diamètre de la tige.# Le long de l'axe X : A – indice H, B – distance entre nœuds, C – LAI, D – N. de la feuille, E – hauteur des pattes, F – diamètre de la tige.
Le coefficient de corrélation de Pearson pour les attributs liés au poids humide est présenté à la figure 6. Les résultats montrent la relation entre le poids humide des feuilles et le poids sec aérien (0,834**), le poids sec total (0,913**) et le poids sec des racines (0,562*). )..La masse sèche totale présente la corrélation positive la plus élevée et la plus significative avec la masse sèche des pousses (0,790**) et la masse sèche des racines (0,741**).
Carte thermique des relations entre les nouvelles variables du coefficient de corrélation de poids.# Axe Y : 1 – poids des feuilles fraîches, 2 – poids des bourgeons frais, 3 – poids des racines fraîches, 4 – poids total des feuilles fraîches.# Axe X : A – poids des feuilles fraîches, B – poids des bourgeons frais, CW – poids des racines fraîches, D – poids frais total.
Les coefficients de corrélation de Pearson pour les attributs liés au poids sec sont présentés dans la figure 7. Les résultats montrent que le poids sec des feuilles, le poids sec des bourgeons (0,848**) et le poids sec total (0,947**), le poids sec des bourgeons (0,854**) et la masse sèche totale (0,781**) ont les valeurs les plus élevées.corrélation positive et corrélation significative.
Carte thermique des relations entre les variables du coefficient de corrélation du poids sec.# L'axe Y représente : le poids sec de 1 feuille, le poids sec de 2 bourgeons, le poids sec de 3 racines, le poids sec total de 4.# Axe X : poids sec de la feuille A, poids sec du bourgeon B, poids sec des racines CW, poids sec total D.
Le coefficient de corrélation de Pearson des propriétés des pigments est présenté à la figure 8. Les résultats montrent que la chlorophylle a et la chlorophylle b (0,716**), la chlorophylle totale (0,968**) et les pigments totaux (0,954**) ;chlorophylle b et chlorophylle totale (0,868**) et pigments totaux (0,851**) ;la chlorophylle totale présente la corrélation positive et significative la plus élevée avec les pigments totaux (0,984**).
Carte thermique des relations entre les variables du coefficient de corrélation de la chlorophylle.# Axes Y : 1- Canal a, 2- Canal.b,3 – rapport a/b, 4 canaux.Total, 5 caroténoïdes, 6 pigments.# Axes X : A-Ch.ab-Ch.b,C- rapport a/b, D-Ch.Teneur totale, E-caroténoïdes, rendement F en pigments.
Le Schefflera nain est une plante d’intérieur populaire dans le monde entier, et sa croissance et son développement font l’objet de beaucoup d’attention de nos jours.L'utilisation de régulateurs de croissance des plantes a entraîné des différences significatives, tous les traitements augmentant la hauteur des plantes par rapport au témoin.Bien que la hauteur des plantes soit généralement contrôlée génétiquement, la recherche montre que l’application de régulateurs de croissance des plantes peut augmenter ou diminuer la hauteur des plantes.La hauteur des plantes et le nombre de feuilles traitées avec l'acide gibbérellique + benzyladénine 200 mg/L étaient les plus élevés, atteignant 109 cm et 38,25, respectivement.Conformément aux études précédentes (SalehiSardoei et al.52) et Spathiphyllum23, des augmentations similaires de la hauteur des plantes dues au traitement à l'acide gibbérellique ont été observées chez les soucis en pot, les albus alba21, les hémérocalles22, les hémérocalles, le bois d'agar et les lis de la paix.
L'acide gibbérellique (GA) joue un rôle important dans divers processus physiologiques des plantes.Ils stimulent la division cellulaire, l’élongation des cellules, l’élongation des tiges et l’augmentation de leur taille24.L’AG induit la division cellulaire et l’élongation des apex et des méristèmes des pousses25.Les modifications des feuilles comprennent également une diminution de l’épaisseur de la tige, une taille de feuille plus petite et une couleur verte plus brillante26.Des études utilisant des facteurs inhibiteurs ou stimulants ont montré que les ions calcium provenant de sources internes agissent comme des seconds messagers dans la voie de signalisation de la gibbérelline dans la corolle du sorgho27.L'HA augmente la longueur des plantes en stimulant la synthèse d'enzymes qui provoquent la relaxation de la paroi cellulaire, telles que XET ou XTH, les expansines et PME28.Cela provoque un élargissement des cellules à mesure que la paroi cellulaire se détend et que l’eau pénètre dans la cellule29.L'application de GA7, GA3 et GA4 peut augmenter l'allongement de la tige30,31.L'acide gibbérellique provoque un allongement de la tige chez les plantes naines et chez les plantes en rosette, l'AG retarde la croissance des feuilles et l'allongement des entre-nœuds32.Cependant, avant le stade de reproduction, la longueur de la tige augmente jusqu'à 4 à 5 fois sa hauteur d'origine33.Le processus de biosynthèse de l'AG dans les plantes est résumé dans la figure 9.
Biosynthèse de GA dans les plantes et niveaux de GA bioactif endogène, représentation schématique des plantes (à droite) et biosynthèse de GA (à gauche).Les flèches sont codées par couleur pour correspondre à la forme d'HA indiquée le long de la voie biosynthétique ;les flèches rouges indiquent une diminution des niveaux de GC en raison de la localisation dans les organes végétaux, et les flèches noires indiquent une augmentation des niveaux de GC.Dans de nombreuses plantes, comme le riz et la pastèque, la teneur en GA est plus élevée à la base ou dans la partie inférieure de la feuille30.De plus, certains rapports indiquent que la teneur en GA bioactif diminue à mesure que les feuilles s'allongent à partir de la base34.Les niveaux exacts de gibbérellines dans ces cas sont inconnus.
Les régulateurs de croissance des plantes influencent également de manière significative le nombre et la superficie des feuilles.Les résultats ont montré que l’augmentation de la concentration du régulateur de croissance des plantes entraînait une augmentation significative de la surface et du nombre de feuilles.Il a été rapporté que la benzyladenine augmente la production de feuilles de calla15.Selon les résultats de cette étude, tous les traitements ont amélioré la surface et le nombre de feuilles.L'acide gibbérellique + la benzyladénine était le traitement le plus efficace et entraînait le plus grand nombre et la plus grande superficie de feuilles.Lors de la culture du schefflera nain en intérieur, il peut y avoir une augmentation notable du nombre de feuilles.
Le traitement GA3 a augmenté la longueur des entre-nœuds par rapport à la benzyladénine (BA) ou à l'absence de traitement hormonal.Ce résultat est logique étant donné le rôle de l’AG dans la promotion de la croissance7.La croissance des tiges a également montré des résultats similaires.L'acide gibbérellique augmente la longueur de la tige mais diminue son diamètre.Cependant, l’application combinée de BA et GA3 a considérablement augmenté la longueur de la tige.Cette augmentation était plus élevée que celle des plantes traitées avec BA ou sans hormone.Bien que l’acide gibbérellique et les cytokinines (CK) favorisent généralement la croissance des plantes, ils ont dans certains cas des effets opposés sur différents processus35.Par exemple, une interaction négative a été observée dans l’augmentation de la longueur de l’hypocotyle chez les plantes traitées avec GA et BA36.D’autre part, BA a augmenté de manière significative le volume des racines (Tableau 1).Une augmentation du volume des racines due au BA exogène a été rapportée dans de nombreuses plantes (par exemple les espèces de Dendrobium et d'Orchidées)37,38.
Tous les traitements hormonaux ont augmenté le nombre de nouvelles feuilles.L’augmentation naturelle de la surface foliaire et de la longueur de la tige grâce à des traitements combinés est commercialement souhaitable.Le nombre de nouvelles feuilles est un indicateur important de la croissance végétative.L’utilisation d’hormones exogènes n’a pas été utilisée dans la production commerciale de Liriodendron tulipifera.Cependant, les effets favorisant la croissance de GA et CK, appliqués de manière équilibrée, pourraient fournir de nouvelles perspectives pour améliorer la culture de cette plante.Notamment, l’effet synergique du traitement BA + GA3 était supérieur à celui du GA ou du BA administrés seuls.L'acide gibbérellique augmente le nombre de nouvelles feuilles.À mesure que de nouvelles feuilles se développent, l’augmentation du nombre de nouvelles feuilles peut limiter la croissance des feuilles39.Il a été rapporté que l’AG améliore le transport du saccharose des puits vers les organes sources40,41.De plus, l’application exogène d’AG sur les plantes vivaces peut favoriser la croissance d’organes végétatifs tels que les feuilles et les racines, empêchant ainsi la transition de la croissance végétative vers la croissance reproductive42.
L’effet de l’AG sur l’augmentation de la matière sèche des plantes peut s’expliquer par une augmentation de la photosynthèse due à une augmentation de la surface foliaire43.Il a été rapporté que GA provoquait une augmentation de la surface foliaire du maïs34.Les résultats ont montré qu’une augmentation de la concentration de BA à 200 mg/L pourrait augmenter la longueur et le nombre de branches secondaires ainsi que le volume des racines.L'acide gibbérellique influence les processus cellulaires tels que la stimulation de la division et de l'élongation cellulaire, améliorant ainsi la croissance végétative43.De plus, l'HA dilate la paroi cellulaire en hydrolysant l'amidon en sucre, réduisant ainsi le potentiel hydrique de la cellule, provoquant la pénétration de l'eau dans la cellule et conduisant finalement à l'élongation cellulaire44.
Heure de publication : 08 mai 2024